| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第16-54页 |
| 1.1 量子点的概述 | 第16-17页 |
| 1.1.1 量子点的定义 | 第16页 |
| 1.1.2 量子点的性质 | 第16-17页 |
| 1.1.3 量子点的种类 | 第17页 |
| 1.2 CdTe量子点的概述 | 第17-23页 |
| 1.2.1 CdTe量子点的合成 | 第17-18页 |
| 1.2.2 CdTe量子点的生物应用 | 第18-20页 |
| 1.2.2.1 生物传感器 | 第18-19页 |
| 1.2.2.2 生物成像 | 第19-20页 |
| 1.2.2.3 药物载体 | 第20页 |
| 1.2.3 生物毒性研究 | 第20-21页 |
| 1.2.4 CdTe量子点与生物大分子相互作用研究 | 第21-23页 |
| 1.2.4.1 与人血清白蛋白(HSA)的相互作用 | 第21-22页 |
| 1.2.4.2 与牛血清白蛋白(BSA)的相互作用 | 第22页 |
| 1.2.4.3 与酶的相互作用 | 第22-23页 |
| 1.3 InP量子点的概述 | 第23-24页 |
| 1.3.1 生物应用 | 第23-24页 |
| 1.3.1.1 荧光传感器 | 第23页 |
| 1.3.1.2 生物成像 | 第23-24页 |
| 1.3.2 生物毒性研究 | 第24页 |
| 1.4 碳点的概述 | 第24-30页 |
| 1.4.1 碳点的性质 | 第24-26页 |
| 1.4.1.1 组成 | 第24页 |
| 1.4.1.2 结构特点 | 第24-25页 |
| 1.4.1.3 光学性质 | 第25-26页 |
| 1.4.2 碳点的合成方法 | 第26-27页 |
| 1.4.2.1 自上而下的方法 | 第26-27页 |
| 1.4.2.2 自下而上的方法 | 第27页 |
| 1.4.3 碳点的生物应用 | 第27-29页 |
| 1.4.3.1 生物传感器 | 第27-28页 |
| 1.4.3.2 生物成像应用 | 第28-29页 |
| 1.4.3.3 药物载体 | 第29页 |
| 1.4.4 生物毒性作用 | 第29-30页 |
| 1.4.4.1 细胞毒性研究 | 第29-30页 |
| 1.4.4.2 生物体内毒性研究 | 第30页 |
| 1.5 石墨烯量子点的概述 | 第30-35页 |
| 1.5.1 石墨烯量子点的性质 | 第30-32页 |
| 1.5.1.1 结构 | 第30页 |
| 1.5.1.2 光学性质 | 第30-32页 |
| 1.5.2 石墨烯量子点的生物应用 | 第32-34页 |
| 1.5.2.1 生物成像 | 第32页 |
| 1.5.2.2 生物传感器 | 第32-33页 |
| 1.5.2.3 药物/基因载体 | 第33-34页 |
| 1.5.2.4 抗癌作用 | 第34页 |
| 1.5.2.5 抗菌和抗氧化活性 | 第34页 |
| 1.5.3 石墨烯量子点的生物毒性研究 | 第34-35页 |
| 1.5.3.1 细胞毒性研究 | 第34-35页 |
| 1.5.3.2 生物体内毒性研究 | 第35页 |
| 1.6 人血清白蛋白的概述 | 第35-36页 |
| 1.7 研究目的、意义和内容 | 第36-38页 |
| 1.7.1 研究目的和意义 | 第36-37页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-54页 |
| 第二章 不同粒径CdTe: Zn~(2+)量子点与HSA相互作用机制研究 | 第54-86页 |
| 2.1 引言 | 第54-55页 |
| 2.2 实验部分 | 第55-60页 |
| 2.2.1 主要的实验仪器和试剂 | 第55-56页 |
| 2.2.1.1 主要的实验仪器 | 第55-56页 |
| 2.2.1.2 主要的实验试剂 | 第56页 |
| 2.2.2 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点的合成[4] | 第56-57页 |
| 2.2.3 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点的表征 | 第57-58页 |
| 2.2.3.1 紫外-可见吸收光谱 | 第57页 |
| 2.2.3.2 荧光发射光谱 | 第57页 |
| 2.2.3.3 相对荧光量子产率[26-27] | 第57-58页 |
| 2.2.3.4 pH对CdTe:Zn~(2+)量子点荧光强度的影响 | 第58页 |
| 2.2.4 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点与HSA的相互作用 | 第58-60页 |
| 2.2.4.1 荧光光谱法 | 第58-59页 |
| 2.2.4.2 紫外-可见吸收光谱 | 第59页 |
| 2.2.4.3 傅里叶转换红外光谱 | 第59页 |
| 2.2.4.4 圆二色光谱 | 第59-60页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第60-80页 |
| 2.3.1 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点的表征 | 第60-62页 |
| 2.3.1.1 紫外-可见吸收光谱和荧光发射光谱 | 第60-61页 |
| 2.3.1.2 高分辨电子显微镜(HRTEM) | 第61页 |
| 2.3.1.3 相对荧光量子产率 | 第61页 |
| 2.3.1.4 pH对CdTe:Zn~(2+)量子点荧光强度的影响 | 第61-62页 |
| 2.3.2 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点与HSA的相互作用 | 第62-80页 |
| 2.3.2.1 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点对HSA内源荧光的猝灭作用 | 第62-63页 |
| 2.3.2.2 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点与HSA相互作用的猝灭机制 | 第63-68页 |
| 2.3.2.3 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点与HSA的主要作用力 | 第68-72页 |
| 2.3.2.4 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点在HSA上的结合位点 | 第72-73页 |
| 2.3.2.5 表观结合常数(K_b)和结合位点数(n) | 第73-75页 |
| 2.3.2.6 结合距离(r) | 第75-76页 |
| 2.3.2.7 不同粒径CdTe:Zn~(2+)量子点对HSA二级结构的影响 | 第76-80页 |
| 2.4 本章小结 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-86页 |
| 第三章 InP/ZnS量子点与HSA相互作用机制研究 | 第86-108页 |
| 3.1 引言 | 第86-87页 |
| 3.2 实验部分 | 第87-89页 |
| 3.2.1 主要的实验仪器和试剂 | 第87页 |
| 3.2.1.1 主要的实验仪器 | 第87页 |
| 3.2.1.2 主要的实验试剂 | 第87页 |
| 3.2.2 水溶性InP/ZnS量子点的制备[19] | 第87-88页 |
| 3.2.3 InP/ZnS量子点的表征 | 第88页 |
| 3.2.3.1 紫外-可见吸收光谱 | 第88页 |
| 3.2.3.2 荧光发射光谱 | 第88页 |
| 3.2.3.3 相对荧光量子产率的测定[22] | 第88页 |
| 3.2.3.4 pH对InP/ZnS量子点荧光强度的影响 | 第88页 |
| 3.2.4 InP/ZnS量子点与HSA的相互作用 | 第88-89页 |
| 3.2.4.1 荧光光谱法 | 第88-89页 |
| 3.2.4.2 紫外-可见吸收光谱 | 第89页 |
| 3.2.4.3 傅里叶转换红外光谱 | 第89页 |
| 3.2.4.4 圆二色光谱 | 第89页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第89-103页 |
| 3.3.1 InP/ZnS量子点的表征 | 第89-92页 |
| 3.3.1.1 紫外-可见吸收光谱和荧光发射光谱 | 第89-90页 |
| 3.3.1.2 高分辨电子显微镜(HRTEM) | 第90-91页 |
| 3.3.1.3 相对荧光量子产率 | 第91页 |
| 3.3.1.4 pH对InP/ZnS量子点荧光强度的影响 | 第91-92页 |
| 3.3.2 InP/ZnS量子点与HSA的相互作用 | 第92-103页 |
| 3.3.2.1 InP/ZnS量子点对HSA内源荧光的猝灭作用 | 第92-93页 |
| 3.3.2.2 InP/ZnS量子点与HSA作用的猝灭类型 | 第93-97页 |
| 3.3.2.3 InP/ZnS量子点与HSA的主要作用力 | 第97-98页 |
| 3.3.2.4 InP/ZnS量子点在HSA上的结合位点 | 第98-99页 |
| 3.3.2.5 表观结合常数(K_b)和结合位点数(n) | 第99-100页 |
| 3.3.2.6 InP/ZnS量子点对HSA二级结构的影响 | 第100-103页 |
| 3.4 本章小结 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-108页 |
| 第四章 荧光碳点与HSA相互作用机制研究 | 第108-138页 |
| 4.1 引言 | 第108-109页 |
| 4.2 实验部分 | 第109-112页 |
| 4.2.1 主要的实验仪器和试剂 | 第109-110页 |
| 4.2.1.1 主要的实验仪器 | 第109页 |
| 4.2.1.2 主要的实验试剂 | 第109-110页 |
| 4.2.2 碳点的合成[25] | 第110页 |
| 4.2.3 碳点的表征 | 第110-111页 |
| 4.2.3.1 紫外-可见吸收光谱 | 第110页 |
| 4.2.3.2 最优激发波长 | 第110页 |
| 4.2.3.3 荧光激发光谱和发射光谱 | 第110页 |
| 4.2.3.4 傅里叶转换红外光谱 | 第110页 |
| 4.2.3.5 相对荧光量子产率的测定[26-27] | 第110页 |
| 4.2.3.6 pH对碳点荧光强度的影响 | 第110-111页 |
| 4.2.3.7 平均相对分子量[23] | 第111页 |
| 4.2.3.8 高分辨电子显微镜(HRTEM) | 第111页 |
| 4.2.4 碳点与HSA的相互作用 | 第111-112页 |
| 4.2.4.1 荧光光谱法 | 第111-112页 |
| 4.2.4.2 紫外-可见吸收光谱 | 第112页 |
| 4.2.4.3 傅里叶转换红外光谱 | 第112页 |
| 4.2.4.4 圆二色光谱 | 第112页 |
| 4.2.4.5 电化学方法 | 第112页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第112-132页 |
| 4.3.1 碳点的表征 | 第112-117页 |
| 4.3.1.1 紫外-可见吸收光谱 | 第112-113页 |
| 4.3.1.2 最优激发波长 | 第113-114页 |
| 4.3.1.3 荧光激发光谱和发射光谱 | 第114页 |
| 4.3.1.4 傅里叶转换红外光谱 | 第114-115页 |
| 4.3.1.5 相对荧光量子产率 | 第115页 |
| 4.3.1.6 pH对碳点荧光强度的影响 | 第115-116页 |
| 4.3.1.7 平均相对分子量 | 第116页 |
| 4.3.1.8 高分辨电子显微镜(HRTEM) | 第116-117页 |
| 4.3.2 碳点与HSA的相互作用 | 第117-132页 |
| 4.3.2.1 碳点对HSA内源荧光的猝灭作用 | 第117-118页 |
| 4.3.2.2 碳点与HSA相互作用的猝灭类型 | 第118-122页 |
| 4.3.2.3 碳点与HSA作用的主要作用力 | 第122-125页 |
| 4.3.2.4 碳点在HSA上的结合位点 | 第125-126页 |
| 4.3.2.5 表观结合常数(K_b)和结合位点数(n) | 第126-127页 |
| 4.3.2.6 电化学方法 | 第127-128页 |
| 4.3.2.7 碳点对HSA二级结构的影响 | 第128-132页 |
| 4.4 本章小结 | 第132-133页 |
| 参考文献 | 第133-138页 |
| 第五章 石墨烯量子点与HSA相互作用机制研究 | 第138-162页 |
| 5.1 引言 | 第138-139页 |
| 5.2 实验部分 | 第139-141页 |
| 5.2.1 主要的实验仪器和试剂 | 第139-140页 |
| 5.2.1.1 主要的实验仪器 | 第139页 |
| 5.2.1.2 主要的实验试剂 | 第139-140页 |
| 5.2.2 石墨烯量子点的表征 | 第140页 |
| 5.2.2.1 紫外-可见吸收光谱 | 第140页 |
| 5.2.2.2 最优激发波长 | 第140页 |
| 5.2.2.3 荧光激发光谱和发射光谱 | 第140页 |
| 5.2.3 石墨烯量子点与HSA的相互作用 | 第140-141页 |
| 5.2.3.1 荧光光谱 | 第140-141页 |
| 5.2.3.2 紫外-可见吸收光谱 | 第141页 |
| 5.2.3.3 傅里叶转换红外光谱 | 第141页 |
| 5.2.3.4 圆二色光谱 | 第141页 |
| 5.2.3.5 电化学方法 | 第141页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第141-155页 |
| 5.3.1 石墨烯量子点的表征 | 第141-143页 |
| 5.3.1.1 紫外-可见吸收光谱 | 第141-142页 |
| 5.3.1.2 最优激发波长 | 第142-143页 |
| 5.3.1.3 荧光激发光谱和发射光谱 | 第143页 |
| 5.3.2 石墨烯量子点与HSA的相互作用 | 第143-155页 |
| 5.3.2.1 石墨烯量子点对HSA内源荧光的猝灭作用 | 第143-144页 |
| 5.3.2.2 石墨烯量子点与HSA相互作用的猝灭类型 | 第144-148页 |
| 5.3.2.3 石墨烯量子点与HSA的主要作用力 | 第148-150页 |
| 5.3.2.4 石墨烯量子点在HSA上的结合位点 | 第150页 |
| 5.3.2.5 石墨烯量子点对HSA二级结构的影响 | 第150-153页 |
| 5.3.2.6 电化学方法 | 第153-155页 |
| 5.4 本章小结 | 第155-156页 |
| 参考文献 | 第156-162页 |
| 第六章 一种以石墨烯量子点为荧光探针检测Cr(Ⅵ)和抗坏血酸的“开-关-开”荧光传感器 | 第162-188页 |
| 6.1 引言 | 第162-163页 |
| 6.2 实验部分 | 第163-168页 |
| 6.2.1 主要的实验仪器和试剂 | 第163-164页 |
| 6.2.1.1 主要的实验仪器 | 第163-164页 |
| 6.2.1.2 主要的实验试剂 | 第164页 |
| 6.2.2 实际样品前处理 | 第164页 |
| 6.2.3 石墨烯量子点的表征 | 第164-165页 |
| 6.2.3.1 紫外-可见吸收光谱 | 第164页 |
| 6.2.3.2 荧光最优激发波长 | 第164-165页 |
| 6.2.3.3 荧光激发光谱和发射光谱 | 第165页 |
| 6.2.3.4 石墨烯量子点的稳定性 | 第165页 |
| 6.2.3.5 相对荧光量子产率的测定[36-37] | 第165页 |
| 6.2.4 Cr(Ⅵ)的检测 | 第165-166页 |
| 6.2.4.1 体系条件的优化 | 第165页 |
| 6.2.4.2 Cr(Ⅵ)的检测线性范围和检出限 | 第165-166页 |
| 6.2.4.3 共存离子的干扰实验 | 第166页 |
| 6.2.4.4 混合样品中Cr(Ⅵ)的检测 | 第166页 |
| 6.2.4.5 实际样品中Cr(Ⅵ)的检测 | 第166页 |
| 6.2.5 AA的检测 | 第166-167页 |
| 6.2.5.1 体系条件的优化 | 第166-167页 |
| 6.2.5.2 AA的检测线性范围和检出限 | 第167页 |
| 6.2.5.3 离子、氨基酸、还原剂的干扰实验 | 第167页 |
| 6.2.5.4 混合样品中AA的检测 | 第167页 |
| 6.2.5.5 实际样品中AA的检测 | 第167页 |
| 6.2.6 GQDs-Cr(Ⅵ)体系的猝灭机制 | 第167-168页 |
| 6.2.6.1 紫外-可见吸收光谱 | 第167-168页 |
| 6.2.6.2 时间分辨荧光衰减曲线的测定 | 第168页 |
| 6.2.6.3 傅里叶转换红外光谱 | 第168页 |
| 6.3 结果和讨论 | 第168-183页 |
| 6.3.1 石墨烯量子点的表征 | 第168-170页 |
| 6.3.2 Cr(Ⅵ)的检测 | 第170-176页 |
| 6.3.2.1 体系条件的优化 | 第170-171页 |
| 6.3.2.2 Cr(Ⅵ)的检测线性范围和检出限 | 第171-172页 |
| 6.3.2.3 共存离子的干扰实验 | 第172-173页 |
| 6.3.2.4 样品中Cr(Ⅵ)的检测 | 第173-176页 |
| 6.3.3 AA的检测 | 第176-180页 |
| 6.3.3.1 体系条件的优化 | 第176-177页 |
| 6.3.3.2 AA的检测线性范围和检出限 | 第177-178页 |
| 6.3.3.3 AA检测的干扰实验 | 第178-179页 |
| 6.3.3.4 合成样品中AA的检测 | 第179-180页 |
| 6.3.3.5 实际样品中AA的检测 | 第180页 |
| 6.3.4 GQDs-Cr(Ⅵ)体系的猝灭机制 | 第180-183页 |
| 6.3.4.1 紫外-可见吸收光谱法 | 第180-182页 |
| 6.3.4.2 时间分辨荧光衰减曲线 | 第182页 |
| 6.3.4.3 傅里叶转换红外光谱 | 第182-183页 |
| 6.4 本章小结 | 第183-184页 |
| 参考文献 | 第184-188页 |
| 硕士期间已发表的论文 | 第188-189页 |
| 硕士期间已申请的专利 | 第189-190页 |
| 致谢 | 第190-191页 |
