| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 前言 | 第11页 |
| 1.2 植物中AsA的生理功能 | 第11-13页 |
| 1.2.1 抗氧化作用 | 第11-12页 |
| 1.2.2 参与细胞分裂 | 第12页 |
| 1.2.3 保护光合作用 | 第12-13页 |
| 1.2.4 作为酶的辅因子 | 第13页 |
| 1.3 植物AsA的代谢 | 第13-16页 |
| 1.3.1 植物AsA的生物合成途径 | 第13-15页 |
| 1.3.2 植物AsA的氧化和再生 | 第15-16页 |
| 1.3.3 植物AsA的降解 | 第16页 |
| 1.4 植物AsA代谢相关酶基因的研究进展 | 第16-21页 |
| 1.4.1 L-半乳糖途径相关酶 | 第17-19页 |
| 1.4.2 D-半乳糖醛酸途径关键酶 | 第19页 |
| 1.4.3 AsA氧化酶 | 第19-20页 |
| 1.4.4 AsA再生酶 | 第20-21页 |
| 1.5 猕猴桃及猕猴桃AsA代谢相关研究 | 第21-23页 |
| 1.5.1 猕猴桃简介 | 第21-22页 |
| 1.5.2 猕猴桃AsA代谢相关研究 | 第22-23页 |
| 1.6 研究内容 | 第23-25页 |
| 1.6.1 毛花猕猴桃'华特'采后果实品质和生理变化 | 第23页 |
| 1.6.2 毛花猕猴桃'华特'采后果实AsA代谢相关酶和相关物质的变化规律 | 第23-24页 |
| 1.6.3 毛花猕猴桃'华特'采后果实AsA代谢相关酶基因表达水平的探究 | 第24-25页 |
| 第2章 毛花猕猴桃'华特'采后果实品质和生理变化 | 第25-33页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.2.1 材料与处理 | 第25-26页 |
| 2.2.2 主要实验试剂 | 第26页 |
| 2.2.3 主要实验仪器 | 第26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.3.1 毛花猕猴桃'华特'可溶性固形物含量的测定 | 第26页 |
| 2.3.2 毛花猕猴桃'华特'可滴定酸含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.3.3 毛花猕猴桃'华特'叶绿素含量的测定 | 第27页 |
| 2.3.4 毛花猕猴桃'华特'丙二醛含量的测定 | 第27页 |
| 2.3.5 毛花猕猴桃'华特'失重率的测定 | 第27-28页 |
| 2.3.6 数据处理 | 第28页 |
| 2.4 结果与分析 | 第28-30页 |
| 2.4.1 毛花猕猴桃'华特'采后果实可溶性固形物含量的变化 | 第28页 |
| 2.4.2 毛花猕猴桃'华特'采后果实可滴定酸含量的变化 | 第28-29页 |
| 2.4.3 毛花猕猴桃'华特'采后果实叶绿素含量的变化 | 第29页 |
| 2.4.4 毛花猕猴桃'华特'采后果实丙二醛含量的变化 | 第29-30页 |
| 2.4.5 毛花猕猴桃'华特'采后果实失重率的变化 | 第30页 |
| 2.5 讨论 | 第30-32页 |
| 2.6 本章小结 | 第32-33页 |
| 第3章 毛花猕猴桃'华特'采后果实AsA代谢相关酶和物质的研究 | 第33-48页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第33-34页 |
| 3.2.1 材料与处理 | 第33页 |
| 3.2.2 主要实验试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.3 主要实验仪器 | 第34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-39页 |
| 3.3.1 毛花猕猴桃'华特'AsA、DHA和T-AsA含量的测定 | 第34-35页 |
| 3.3.2 毛花猕猴桃'华特'可溶性糖和还原糖含量的测定 | 第35-36页 |
| 3.3.3 毛花猕猴桃'华特'蔗糖、葡萄糖和果糖含量的测定 | 第36页 |
| 3.3.4 毛花猕猴桃'华特'GalDH和GalLDH活性的测定 | 第36-37页 |
| 3.3.5 毛花猕猴桃'华特'GalUR活性的测定 | 第37页 |
| 3.3.6 毛花猕猴桃'华特'AO和APX活性的测定 | 第37-38页 |
| 3.3.7 毛花猕猴桃'华特'MDHAR和DHAR活性的测定 | 第38页 |
| 3.3.8 毛花猕猴桃'华特'TA和OA含量的测定 | 第38-39页 |
| 3.3.9 数据处理 | 第39页 |
| 3.4 结果与分析 | 第39-45页 |
| 3.4.1 毛花猕猴桃'华特'采后果实AsA、DHA和T-AsA含量变化 | 第39-40页 |
| 3.4.2 毛花猕猴桃'华特'采后果实碳水化合物含量的变化 | 第40-42页 |
| 3.4.3 毛花猕猴桃'华特'采后果实GalDH和GalLDH活性的变化 | 第42页 |
| 3.4.4 毛花猕猴桃'华特'采后果实GalUR活性的变化 | 第42-43页 |
| 3.4.5 毛花猕猴桃'华特'采后果实AO和APX活性的变化 | 第43-44页 |
| 3.4.6 毛花猕猴桃'华特'采后果实MDHAR和DHAR活性的变化 | 第44页 |
| 3.4.7 毛花猕猴桃'华特'采后果实TA和OA含量的变化 | 第44-45页 |
| 3.5 讨论 | 第45-47页 |
| 3.6 本章小结 | 第47-48页 |
| 第4章 毛花猕猴桃'华特'采后果实AsA代谢相关酶基因表达量研究 | 第48-62页 |
| 4.1 引言 | 第48页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第48-49页 |
| 4.2.1 材料与处理 | 第48页 |
| 4.2.2 主要实验试剂 | 第48-49页 |
| 4.2.3 主要实验仪器 | 第49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-51页 |
| 4.3.1 毛花猕猴桃'华特'总RNA的提取 | 第49页 |
| 4.3.2 RNA逆转录实验 | 第49-50页 |
| 4.3.3 荧光定量PCR引物设计和合成 | 第50-51页 |
| 4.3.4 Real-Time PCR扩增体系和反应条件 | 第51页 |
| 4.3.5 实时荧光定量PCR差异统计分析 | 第51页 |
| 4.3.6 数据处理 | 第51页 |
| 4.4 结果与分析 | 第51-59页 |
| 4.4.1 毛花猕猴桃'华特'总RNA纯度、完整性检验 | 第51-52页 |
| 4.4.2 毛花猕猴桃'华特'AsA代谢相关酶基因扩增曲线及熔点曲线 | 第52-55页 |
| 4.4.3 毛花猕猴桃'华特'L-半乳糖途径相关基因相对表达量的变化 | 第55-57页 |
| 4.4.4 毛花猕猴桃'华特'采后GalUR基因相对表达量的变化 | 第57-58页 |
| 4.4.5 毛花猕猴桃'华特'采后果实AO和APX基因相对表达量的变化 | 第58页 |
| 4.4.6 毛花猕猴桃'华特'采后果实MDHAR和DHAR基因相对表达量的变化 | 第58-59页 |
| 4.5 讨论 | 第59-61页 |
| 4.6 本章小结 | 第61-62页 |
| 第5章 总结 | 第62-64页 |
| 5.1 主要研究结论 | 第62页 |
| 5.2 创新点 | 第62-63页 |
| 5.3 展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-73页 |
| 附录 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
