| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略语表 | 第13-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-38页 |
| 1 水稻籼粳杂种不育机理的研究 | 第14-29页 |
| 1.1 籼粳亚种间的遗传分化 | 第14-16页 |
| 1.2 籼粳杂种不育的细胞学研究 | 第16-20页 |
| 1.2.1 雌配子败育 | 第16-17页 |
| 1.2.2 雄配子败育 | 第17-18页 |
| 1.2.3 花药开裂异常 | 第18页 |
| 1.2.4 花粉在柱头上的附着及萌发障碍 | 第18-19页 |
| 1.2.5 雌雄异熟 | 第19页 |
| 1.2.6 环境条件 | 第19-20页 |
| 1.3 籼粳杂种不育的遗传模式 | 第20-21页 |
| 1.3.1 重复隐性基因配子体致死模式 | 第20页 |
| 1.3.2 单位点孢子体-配子体互作模式 | 第20-21页 |
| 1.4 水稻籼粳杂种不育基因的定位及克隆 | 第21-29页 |
| 1.4.1 雌配子败育位点的定位 | 第22-24页 |
| 1.4.2 雌配子败育位点的克隆 | 第24-25页 |
| 1.4.3 雄配子败育位点的定位 | 第25-27页 |
| 1.4.4 雄配子败育位点的克隆 | 第27-28页 |
| 1.4.5 雌、雄配子同时败育位点的定位 | 第28-29页 |
| 2 被子植物雌配子体的发育及受精 | 第29-35页 |
| 2.1 胚囊的发育 | 第29-31页 |
| 2.2 胚囊发育过程中细胞骨架的变化 | 第31-32页 |
| 2.3 胚囊发育过程中的调控基因 | 第32-34页 |
| 2.3.1 参与大孢子发生过程的基因 | 第32-33页 |
| 2.3.2 参与雌配子体发生过程的基因 | 第33-34页 |
| 2.4 胚囊对花粉管的引导和受精 | 第34-35页 |
| 3 Tetratricopeptide repeat (TPR)结构域 | 第35-37页 |
| 3.1 TPR的序列和结构特征 | 第35-36页 |
| 3.2 包含TPR结构域的蛋白及功能 | 第36-37页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第37-38页 |
| 第二章 水稻籼粳杂种胚囊败育的细胞学研究 | 第38-48页 |
| 1 材料与方法 | 第39-41页 |
| 1.1 供试材料 | 第39页 |
| 1.2 I_2-KI染色法测定花粉育性 | 第39页 |
| 1.3 花粉离体培养测定花粉萌发率 | 第39-40页 |
| 1.4 花粉在柱头上的附着、萌发与伸长观察 | 第40页 |
| 1.5 核特异荧光染色与整体透明技术观察胚囊发育 | 第40-41页 |
| 1.6 盐酸浸泡结合I_2-KI染色法观察胚囊受精情况 | 第41页 |
| 1.7 饱和授粉 | 第41页 |
| 1.8 小穗育性的考察 | 第41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-46页 |
| 2.1 亲本和F_1的花粉、小穗育性 | 第41-43页 |
| 2.2 亲本和F_1花粉萌发、伸长及饱和授粉 | 第43-44页 |
| 2.3 亲本和F_1胚囊发育过程的观察及其育性统计 | 第44-46页 |
| 3 讨论 | 第46-48页 |
| 3.1 雌配子的成熟 | 第46页 |
| 3.2 S7位点胚囊败育的细胞学探究 | 第46-48页 |
| 第三章 水稻籼粳杂种败育基因S7的精细定位 | 第48-60页 |
| 1 材料与方法 | 第49-51页 |
| 1.1 供试材料 | 第49页 |
| 1.2 I_2-KI染色法测定花粉育性 | 第49页 |
| 1.3 小穗育性的考察 | 第49页 |
| 1.4 DNA的提取及PCR分析 | 第49-50页 |
| 1.5 配子传递率 | 第50页 |
| 1.6 dCAPS、CAPS标记的开发 | 第50页 |
| 1.7 单位物理距离内染色体交换率的计算 | 第50-51页 |
| 1.8 目标区域基因预测 | 第51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-57页 |
| 2.1 Ingra/Cpslo17 F_1、Ingra/IR36 F_1半不育的遗传学分析 | 第51-52页 |
| 2.2 S7位点的广亲和测验 | 第52-53页 |
| 2.3 S7的精细定位 | 第53-55页 |
| 2.4 单位物理距离内染色体交换率的分析 | 第55-56页 |
| 2.5 S7目的区域内基因预测和分析 | 第56-57页 |
| 3 讨论 | 第57-60页 |
| 3.1 中性等位基因在籼粳杂种优势利用的应用 | 第57-58页 |
| 3.2 重组抑制 | 第58-60页 |
| 第四章 S7候选基因的遗传转化和功能分析 | 第60-78页 |
| 1 材料与方法 | 第61-63页 |
| 1.1 材料及种植 | 第61页 |
| 1.2 DNA的提取及PCR分析 | 第61页 |
| 1.3 目标区域基因序列测定 | 第61-62页 |
| 1.4 RNA干扰载体的构建 | 第62页 |
| 1.5 农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第62页 |
| 1.6 RNA干扰转基因植株的PCR鉴定 | 第62页 |
| 1.7 I_2-KI染色法测定花粉育性 | 第62页 |
| 1.8 核特异荧光染色与整体透明技术观察胚囊发育 | 第62-63页 |
| 1.9 小穗育性的考察 | 第63页 |
| 1.10 Real-time PCR (RT-PCR) | 第63页 |
| 1.11 同源序列比对和系统进化分析 | 第63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-73页 |
| 2.1 ORF3的组织表达分析和氨基酸序列比对 | 第63-65页 |
| 2.2 RNAi转基因植株的PCR检测及表型分析 | 第65-72页 |
| 2.3 ORF3等位基因的进化分析 | 第72-73页 |
| 3 讨论 | 第73-78页 |
| 3.1 杂种不育基因的克隆和功能研究 | 第73-74页 |
| 3.2 杂种不育与基因互作 | 第74-76页 |
| 3.3 水稻起源与水稻杂种不育位点的进化模式 | 第76-78页 |
| 第五章 全文总结 | 第78-82页 |
| 1 全文结论 | 第78-80页 |
| 1.1 Ingra/Cpslo17、Ingra/IR36杂种F_1小穗半不育由胚囊败育导致 | 第78-79页 |
| 1.2 杂种F_1中败育胚囊基因型分别为S7~(cp)、S7~i | 第79页 |
| 1.3 S7位于第7染色体着丝粒附近的139 kb范围内 | 第79页 |
| 1.4 Ingra/Cpslo17 F_(2:3)群体中重组抑制可能与逆转录转座子富集有关 | 第79-80页 |
| 1.5 编码包含TPR结构域蛋白质的ORF3参与S7控制的杂种胚囊败育 | 第80页 |
| 2 本研究创新之处 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-102页 |
| 附录 | 第102-114页 |
| 在读期间发表的论文 | 第114-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
