摘要 | 第1-11页 |
ABSTRACT | 第11-14页 |
缩略词表 | 第14-15页 |
引言 | 第15-16页 |
第一章 文献综述 | 第16-30页 |
1 植物开花研究进展 | 第16-26页 |
·植物开花分子机制研究进展 | 第16-21页 |
·菊花开花分子机制的研究进展 | 第21页 |
·影响植物开花因素 | 第21-26页 |
2 FT基因及其蛋白特性 | 第26-29页 |
·FT在植物生长发育中的多种角色 | 第26页 |
·FT的可移动性 | 第26-27页 |
·FT蛋白关键位点与开花功能的研究 | 第27-28页 |
·FT可变剪切与开花 | 第28-29页 |
3. 问题与展望 | 第29-30页 |
第二章 菊花CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3基因的克隆及表达变化分析 | 第30-44页 |
第一节 菊花CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3基因的克隆 | 第30-38页 |
摘要 | 第30-31页 |
1 材料与方法 | 第31-33页 |
·植物材料与菌株 | 第31页 |
·CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3基因克隆 | 第31-32页 |
·CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3基因序列分析 | 第32-33页 |
2 结果与分析 | 第33-36页 |
·菊花CmFT-like 1,2,3基因的克隆 | 第33-34页 |
·CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3氨基酸序列与其他物种FT氨基酸序列同源性比对 | 第34-35页 |
·CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3系统进化树分析 | 第35-36页 |
3 讨论 | 第36-38页 |
第二节 菊花叶片中CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3开花过程的表达变化分析 | 第38-44页 |
摘要 | 第38页 |
1 材料与方法 | 第38-40页 |
·植物材料与取样条件与方法 | 第38-39页 |
·石蜡切片样品制备 | 第39页 |
·RNA样品及cDNA样品制备 | 第39页 |
·通过qRT-PCR建立CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3在‘神马’和‘优香’叶片中表达变化 | 第39-40页 |
2 结果与分析 | 第40-43页 |
·RNA质量的检测 | 第40-41页 |
·CmFTL1、CmFTL2和CmFTL3在‘优香’和‘神马’叶片中表达变化 | 第41-43页 |
3 讨论 | 第43-44页 |
第三章 CmFTL1基因功能的研究 | 第44-70页 |
第一节 菊花CmFTL1基因的功能研究 | 第44-64页 |
摘要 | 第44页 |
1 材料与方法 | 第44-56页 |
·植物材料、载体和菌株 | 第44-45页 |
·CmFTL1的亚细胞定位载体构建及基因枪法瞬时表达 | 第45-46页 |
·RNA原位杂交 | 第46-49页 |
·拟南芥ft-10突变体互补 | 第49-52页 |
·菊花‘优香’和‘神马’的遗传转化 | 第52-56页 |
2 结果与分析 | 第56-62页 |
·CmFTL1亚细胞定位 | 第56页 |
·RNA原位杂交 | 第56-57页 |
·CmFTL1对拟南芥ft-10突变体互补实验 | 第57-58页 |
·超表达CmFTL1和CmFTL1-amiRNA人工干扰 | 第58-62页 |
3 讨论 | 第62-64页 |
第二节 CmFTL1可变剪切基因功能初探 | 第64-70页 |
摘要 | 第64页 |
1 材料与方法 | 第64-65页 |
·植物材料与菌株 | 第64-65页 |
·CmFTL-asts基因发现与序列分析 | 第65页 |
·拟南芥ft-10突变体互补 | 第65页 |
2 结果与分析 | 第65-68页 |
·菊花CmFTL1-asts氨基酸序列分析 | 第65-67页 |
·CmFTL1-asts对拟南芥ft-10突变体的回补 | 第67-68页 |
3 讨论 | 第68-70页 |
第四章 菊花CmFTL2基因的功能研究 | 第70-78页 |
摘要 | 第70-71页 |
1 材料与方法 | 第71-72页 |
·植物材料、载体和菌株 | 第71页 |
·CmFTL2的亚细胞定位载体构建及基因枪法瞬时表达 | 第71页 |
·拟南芥ft-10突变体互补 | 第71-72页 |
·CmFTL2对蔗糖处理的响应 | 第72页 |
2 结果与分析 | 第72-75页 |
·CmFTL2亚细胞定位 | 第72-73页 |
·CmFTL2对ft-10拟南芥突变体功能回补 | 第73-74页 |
·CmFTL2对蔗糖的响应 | 第74-75页 |
3 讨论 | 第75-78页 |
第五章 菊花CmFTL3基因相关开花机理研究 | 第78-96页 |
第一节 CmFTL3及其多态性基因的功能分析 | 第78-88页 |
摘要 | 第78-79页 |
1 材料与方法 | 第79-80页 |
·植物材料、载体和菌株 | 第79页 |
·CmFTL3的亚细胞定位 | 第79页 |
·‘优香’体内CmFTL3-amiRNA人工干扰 | 第79页 |
·CmFTLpsl、2、3、4基因克隆与序列分析 | 第79-80页 |
·拟南芥ft-10突变体互补 | 第80页 |
2 结果与分析 | 第80-85页 |
·CmFTL3亚细胞定位结果 | 第80页 |
·‘优香’体内CmFTL3-amiRNA人工干扰 | 第80-81页 |
·菊花CmFTLpsl、CmFTLps2、CmFTLps3、CmFTLps4基因的克隆、序列分析 | 第81-82页 |
·CmFTL3、CmFTLps1、CmFTLps2、CmFTLps3、和CmFTLps4对拟南芥突变体ft-10功能互补 | 第82-85页 |
3 讨论 | 第85-88页 |
第二节 菊花CmFTL3互作蛋白的筛选及克隆 | 第88-96页 |
摘要 | 第88-89页 |
1 材料与方法 | 第89-91页 |
·植物材料与菌株 | 第89页 |
·‘优香'cDNA酵母文库构建 | 第89-90页 |
·CmFTL3酵母双杂 | 第90-91页 |
2 结果与分析 | 第91-93页 |
·‘优香’酵母cDNA文库构建 | 第91-92页 |
·CmFTL3酵母双杂结果 | 第92-93页 |
3 讨论 | 第93-96页 |
第六章 菊花脑热激表达谱热响应基因挖掘 | 第96-116页 |
摘要 | 第96-97页 |
1 材料与方法 | 第97-100页 |
·植物材料及RNA-Seq样品制备 | 第97页 |
·RNA-seq测序数据的处理 | 第97-98页 |
·实时荧光定量实验(qRT-PCR)验证 | 第98页 |
·菊花脑CnHsp 17.4基因的启动子克隆 | 第98-100页 |
2 结果与分析 | 第100-113页 |
·RNA-seq数据的概要分析 | 第100-101页 |
·Clean reads的比对分析 | 第101-102页 |
·GO和KEGG分类 | 第102-103页 |
·菊花脑热激表达谱qRT-PCR的验证 | 第103页 |
·热激胁迫后出现的差异表达基因概述 | 第103-110页 |
·热激胁迫下开花相关基因挖掘 | 第110-113页 |
3 讨论 | 第113-116页 |
全文结论 | 第116-118页 |
创新点 | 第118-120页 |
参考文献 | 第120-138页 |
附录 | 第138-152页 |
攻读学位期间发表论文及参与的科研项目 | 第152-154页 |
致谢 | 第154页 |