| 英文缩略词索引 | 第1-10页 |
| 摘要 | 第10-11页 |
| abstract | 第11-13页 |
| 第一部分 | 第13-76页 |
| 摘要 | 第13-14页 |
| Abstract | 第14-15页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 材料和方法 | 第17-33页 |
| 一、材料 | 第17-22页 |
| 1. 细胞系 | 第17页 |
| 2. 裸鼠 | 第17页 |
| 3. 引物合成 | 第17-18页 |
| 4. 试验相关药品和试剂 | 第18-21页 |
| 5. 主要仪器和软件 | 第21-22页 |
| 二、方法 | 第22-33页 |
| 1. 细胞相关研究方法 | 第22-26页 |
| 2. 蛋白相关研究方法 | 第26-29页 |
| 3. 基因相关实验研究方法 | 第29-31页 |
| 4. 小鼠移植瘤相关实验和方法 | 第31-33页 |
| 结果 | 第33-63页 |
| 一、YM155抑制食管癌细胞的生长 | 第33-38页 |
| 1. YM155结构图 | 第33页 |
| 2. Survivin在不同食管癌细胞中表达 | 第33-34页 |
| 3. SLC35F2在不同食管癌细胞中表达 | 第34-35页 |
| 4. 抑制食管癌细胞增殖的剂量依赖曲线 | 第35-36页 |
| 5. 抑制食管癌细胞增殖的时间依赖曲线 | 第36-37页 |
| 6. 对小鼠胚胎成纤维细胞的剂量依赖曲线 | 第37页 |
| 7. 抑制细胞周期 | 第37-38页 |
| 二、YM155诱导食管癌细胞死亡 | 第38-45页 |
| 1. 诱导食管癌细胞死亡 | 第38-39页 |
| 2. 引起细胞形态变化 | 第39-40页 |
| 3. 诱导食管癌细胞线粒体通透性变化 | 第40页 |
| 4. 诱导食管癌细胞活性氧生成增多 | 第40-41页 |
| 5. 对食管癌细胞的长效影响 | 第41页 |
| 6. 诱导食管癌细胞内凋亡相关蛋白变化 | 第41-42页 |
| 7. 诱导食管癌细胞内自噬相关蛋白变化 | 第42-43页 |
| 8. 诱导食管癌细胞mTOR通路变化 | 第43-44页 |
| 9. 引起食管癌细胞释放坏死相关因子LDH | 第44页 |
| 10. 引起食管癌细胞释放坏死相关因子TNF-α和HMGB1 | 第44-45页 |
| 三、YM155引起食管癌细胞DNA损伤和PARP的激活 | 第45-54页 |
| 1. 诱导DNA损伤标志分子γH2AX表达 | 第45-47页 |
| 2. 诱导PARP-1表达 | 第47-48页 |
| 3. PARP激活诱导形成PAR | 第48-49页 |
| 4. PARP激活导致食管癌细胞内ATP含量降低 | 第49-50页 |
| 5. PARP激活导致食管癌细胞内NAD~+含量降低 | 第50-51页 |
| 6. PARP激活诱导AIF从线粒体转移到细胞核 | 第51-52页 |
| 7. 敲降PARP-1降低食管癌细胞对YM155敏感性 | 第52-53页 |
| 8. 敲降AIF降低食管癌细胞对YM155敏感性 | 第53-54页 |
| 四、YM155对食管癌细胞转录表达谱的影响 | 第54-57页 |
| 1. 诱导基因表达谱变化 | 第54-55页 |
| 2. 差异基因进行通路分析 | 第55-56页 |
| 3. Real-time PCR验证差异基因 | 第56-57页 |
| 五、YM155在体内移植瘤中的作用效果 | 第57-63页 |
| 1. 抑制KYSE410移植瘤生长同时不影响小鼠体重 | 第57-58页 |
| 2. 降低KYSE410移植瘤的肿瘤重量 | 第58-59页 |
| 3. KYSE410移植瘤组织HE染色和免疫组化结果 | 第59页 |
| 4. 抑制KYSE150移植瘤生长同时不影响小鼠体重 | 第59-60页 |
| 5. 降低KYSE150移植瘤的肿瘤重量 | 第60-61页 |
| 6. KYSE150移植瘤组织HE染色和免疫组化结果 | 第61-63页 |
| 讨论 | 第63-69页 |
| 小结 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-76页 |
| 第二部分 | 第76-103页 |
| 摘要 | 第76-77页 |
| Abstract | 第77-78页 |
| 引言 | 第78-79页 |
| 材料和方法 | 第79-81页 |
| 一、材料 | 第79页 |
| 二、方法 | 第79-81页 |
| 1. ELISA检测血清Stathmin | 第79页 |
| 2. ELISA检测血清Cyfra21-1浓度 | 第79-80页 |
| 3. 化学发光法检测血清CEA,CA19-9和CA72-4浓度 | 第80页 |
| 4. 统计学处理 | 第80-81页 |
| 结果 | 第81-96页 |
| 一、小样本食管鳞癌患者与健康对照血清Stathmin表达水平及临床意义 | 第81-86页 |
| 1. 食管鳞癌患者与健康对照血清Stathmin表达水平 | 第81页 |
| 2. 食管鳞癌患者血清Stathmin表达与临床参数的关系 | 第81-85页 |
| 3. 食管癌患者血清Stathmin水平对ESCC的诊断评价 | 第85-86页 |
| 二、不同肿瘤患者血清Stathmin表达水平 | 第86-89页 |
| 1. 头颈癌患者与健康对照血清Stathmin表达水平 | 第86-87页 |
| 2. 胃癌患者与健康对照血清Stathmin表达水平 | 第87-88页 |
| 3. 肝癌患者与健康对照血清Stathmin表达水平 | 第88页 |
| 4. 结肠癌患者与健康对照血清Stathmin表达水平 | 第88-89页 |
| 5. 不同肿瘤患者血清Stathmin表达水平分析 | 第89页 |
| 三、大样本量食管鳞癌患者与健康对照血清Stathmin表达水平及意义 | 第89-96页 |
| 1. 管鳞癌患者与健康对照血清Stathmin表达水平 | 第90页 |
| 2. ROC分析食管鳞癌患者与健康对照血清Stathmin浓度 | 第90-91页 |
| 3. 食管鳞瘤患者血清Stathmin水平与临床病理参数 | 第91-96页 |
| 讨论 | 第96-99页 |
| 小结 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-103页 |
| 附录 | 第103-115页 |
| 基金资助 | 第115-116页 |
| 文献综述 | 第116-129页 |
| 参考文献 | 第125-129页 |
| 硕士在读期间发表文章及专利 | 第129-130页 |
| 致谢 | 第130-131页 |
| 个人简历 | 第131-132页 |
| 接收及待发表的文章 | 第132-138页 |
| 附录 发表的文章 | 第138-155页 |
| 学位论文原创性和授权使用说明书 | 第155页 |
