摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-9页 |
1 绪论 | 第9-24页 |
·花色苷的研究现状 | 第9-22页 |
·花色苷的化学结构及分类 | 第9-11页 |
·花色苷的理化性质 | 第11页 |
·花色苷的合成、吸收和代谢 | 第11-13页 |
·花色苷的定量分析 | 第13-14页 |
·花色苷的提取方法 | 第14-16页 |
·花色苷的纯化方法 | 第16-17页 |
·花色苷的结构分析方法 | 第17-18页 |
·花色苷的生理活性 | 第18-22页 |
·蓝靛果研究现状 | 第22-23页 |
·蓝靛果简介 | 第22页 |
·蓝靛果的营养价值 | 第22页 |
·蓝靛果的药用价值 | 第22-23页 |
·蓝靛果的开发现状及前景 | 第23页 |
·研究的目的和意义 | 第23-24页 |
2 提取条件对蓝靛果花色苷体外抗氧化活性的影响 | 第24-34页 |
·引言 | 第24页 |
·试验材料及仪器 | 第24-25页 |
·试验材料 | 第24页 |
·试验仪器 | 第24-25页 |
·试验方法 | 第25-27页 |
·蓝靛果花色苷的提取工艺流程 | 第25页 |
·花色苷含量的测定 | 第25页 |
·羟自由基清除率的测定 | 第25页 |
·DPPH自由基清除率的测定 | 第25页 |
·蓝靛果花色苷的提取单因素试验 | 第25-26页 |
·最佳提取条件优化结果 | 第26-27页 |
·结果与分析 | 第27-33页 |
·提取条件对花色苷提取量及体外抗氧化活性影响的单因素试验结果 | 第27-31页 |
·正交试验结果 | 第31-33页 |
·本章小结 | 第33-34页 |
3 蓝靛果花色苷对肿瘤细胞的抑制作用 | 第34-46页 |
·引言 | 第34页 |
·试验材料与仪器 | 第34-35页 |
·试验材料 | 第34页 |
·试验仪器 | 第34-35页 |
·溶液配制 | 第35页 |
·PBS缓冲液配制 | 第35页 |
·MTT溶液配制 | 第35页 |
·胰蛋白酶溶液配制 | 第35页 |
·血清灭活 | 第35页 |
·细胞培养液配制 | 第35页 |
·试验方法 | 第35-38页 |
·细胞培养 | 第35-36页 |
·蓝靛果花色苷的制备 | 第36页 |
·蓝靛果花色苷对肿瘤细胞抑制率的测定 | 第36-37页 |
·倒置显微镜观察肿瘤细胞形态 | 第37页 |
·AO/EB荧光染色 | 第37页 |
·流式细胞仪(FCM)分析 | 第37-38页 |
·结果与分析 | 第38-44页 |
·MTT法测定蓝靛果花色苷对肿瘤细胞增殖的影响结果 | 第38-40页 |
·倒置显微镜观察对HT29肿瘤细胞增殖的影响 | 第40-41页 |
·AO/EB染色结果 | 第41-42页 |
·流式细胞仪分析结果 | 第42-44页 |
·本章小结 | 第44-46页 |
4 蓝靛果花色苷抗肿瘤功能机理的初步研究 | 第46-59页 |
·引言 | 第46页 |
·试验材料与仪器 | 第46-47页 |
·试验材料 | 第46页 |
·试验仪器 | 第46-47页 |
·试验方法 | 第47-51页 |
·单细胞凝胶电泳检测HT29肿瘤细胞DNA损伤 | 第47页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测HT29肿瘤细胞DNA损伤 | 第47-48页 |
·荧光显微镜观察HT29肿瘤细胞凋亡 | 第48页 |
·扫描电镜观察HT29肿瘤细胞凋亡 | 第48-49页 |
·透射电镜观察HT29肿瘤细胞凋亡 | 第49-50页 |
·线粒体膜电位的检测 | 第50页 |
·半胱天冬酶-3(Caspase-3)酶活的测定 | 第50-51页 |
·蓝靛果花色苷对正常小鼠脾脏细胞增殖的影响 | 第51页 |
·结果与分析 | 第51-57页 |
·单细胞凝胶电泳检测HT29肿瘤细胞DNA损伤结果 | 第51-52页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测HT29肿瘤细胞DNA损伤结果 | 第52-53页 |
·荧光显微镜形态观察HT29肿瘤细胞凋亡结果 | 第53页 |
·扫描电镜观察HT29肿瘤细胞凋亡结果 | 第53-54页 |
·透射电镜观察HT29肿瘤细胞凋亡结果 | 第54-55页 |
·线粒体膜电位检测结果 | 第55-56页 |
·半胱天冬酶-3(Caspase-3)酶活的测定结果 | 第56-57页 |
·蓝靛果花色苷对正常小鼠脾脏细胞增殖的影响结果 | 第57页 |
·本章小结 | 第57-59页 |
结论 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-67页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第67-68页 |
致谢 | 第68-69页 |