| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 主要符号表 | 第9-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-27页 |
| ·沙蚕 | 第10-12页 |
| ·沙蚕简介 | 第10-11页 |
| ·沙蚕研究现状 | 第11-12页 |
| ·海洋生物抗肿瘤活性物质 | 第12-21页 |
| ·研究进展 | 第13-17页 |
| ·海洋天然抗癌化合物种类 | 第17-19页 |
| ·常用分离纯化方法及活性筛选技术 | 第19-21页 |
| ·癌细胞的凋亡与分化 | 第21-25页 |
| ·癌细胞凋亡过程与机理 | 第21-22页 |
| ·线粒体途径 | 第21-22页 |
| ·死亡受体途径 | 第22页 |
| ·药物诱导恶性黑色素瘤细胞凋亡机理研究 | 第22-23页 |
| ·药物对肿瘤细胞的诱导分化作用 | 第23-25页 |
| ·本课题的主要研究内容与创新点 | 第25-27页 |
| ·本课题的研究背景及立论依据 | 第25-26页 |
| ·本课题的主要研究内容 | 第26页 |
| ·本课题的主要创新点 | 第26-27页 |
| 第二章 沙蚕活性物质的提取及其抗肿瘤活性评价 | 第27-38页 |
| ·实验材料与仪器 | 第27-29页 |
| ·实验材料与试剂 | 第27页 |
| ·主要仪器设备 | 第27-28页 |
| ·常用溶剂配制 | 第28-29页 |
| ·实验方法 | 第29-32页 |
| ·沙蚕萃取物的制备 | 第29页 |
| ·沙蚕的冷冻干燥 | 第29页 |
| ·沙蚕的有机溶剂萃取物的制备 | 第29页 |
| ·细胞培养 | 第29-31页 |
| ·细胞的换液与传代 | 第30页 |
| ·细胞的保种和复苏 | 第30页 |
| ·细胞计数 | 第30-31页 |
| ·沙蚕萃取物的抗肿瘤活性评价 | 第31页 |
| ·2种沙蚕萃取物的母液制备 | 第31页 |
| ·MTT法检测沙蚕萃取物对不同肿瘤细胞的生长抑制作用 | 第31页 |
| ·统计学分析 | 第31-32页 |
| ·结果与讨论 | 第32-36页 |
| ·沙蚕萃取物的制备 | 第32页 |
| ·两种沙蚕乙醇浸膏萃取物的抗肿瘤活性评价 | 第32-36页 |
| ·两种沙蚕萃取物对不同肿瘤细胞增殖的抑制作用 | 第32-34页 |
| ·细胞形态学观察 | 第34-36页 |
| ·小结 | 第36-38页 |
| 第三章 沙蚕萃取物A_2的分离纯化及抗肿瘤活性评价 | 第38-48页 |
| ·实验材料与仪器 | 第38页 |
| ·实验材料与试剂 | 第38页 |
| ·主要仪器设备 | 第38页 |
| ·常用溶剂配制 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-41页 |
| ·组分A_2的硅胶柱分离 | 第38-39页 |
| ·硅胶柱装柱(湿法装柱) | 第38-39页 |
| ·硅胶柱层析洗脱过程 | 第39页 |
| ·A_2各分离组分的体外抗肿瘤活性评价 | 第39页 |
| ·制备型HPLC分离 | 第39-40页 |
| ·制备型HPLC分离过程 | 第39-40页 |
| ·制备型HPLC分离各组分的体外抗肿瘤活性评价 | 第40页 |
| ·制备型HPLC分离组分的HPLC-MS分析 | 第40页 |
| ·统计学分析 | 第40-41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-47页 |
| ·沙蚕萃取物A_2的硅胶柱层析 | 第41-42页 |
| ·萃取物A_2硅胶柱各分离组分的抗肿瘤活性评价 | 第42-44页 |
| ·组分B4的制备型HPLC分离 | 第44-45页 |
| ·B_4经制备型HPCL分离各组分的抗肿瘤活性评价 | 第45-46页 |
| ·组分C_(44)的HPLC-MS分析 | 第46-47页 |
| ·小结 | 第47-48页 |
| 第四章 组分C_(44)对人黑色素瘤细胞A375作用机制探讨 | 第48-62页 |
| ·实验材料与仪器 | 第48页 |
| ·实验材料与试剂 | 第48页 |
| ·主要仪器设备 | 第48页 |
| ·常用溶剂配制 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48-51页 |
| ·MTT法检测组分C_(44)对A375细胞增殖的抑制作用 | 第48-49页 |
| ·AO/EB染色 | 第49页 |
| ·PI染色检测细胞周期分布 | 第49页 |
| ·Annexin V-FITC/PI染色检测细胞凋亡 | 第49-50页 |
| ·Caspase 3酶活性检测 | 第50-51页 |
| ·黑色素含量测定与相对酪氨酸酶活力检测 | 第51页 |
| ·结果与讨论 | 第51-61页 |
| ·组分C_(44)对A375细胞增殖的抑制作用 | 第51-52页 |
| ·AO/EB染色观察 | 第52-54页 |
| ·PI染色检测细胞周期分布 | 第54-56页 |
| ·Annexin V-FITC/PI染色检测细胞凋亡 | 第56-58页 |
| ·Caspase 3酶活性检测 | 第58-59页 |
| ·黑色素含量与相对酪氨酸酶活性检测 | 第59-61页 |
| ·小结 | 第61-62页 |
| 第五章 沙蚕提取物的其他药效实验研究 | 第62-72页 |
| ·实验材料与仪器 | 第62-63页 |
| ·实验材料与试剂 | 第62页 |
| ·实验仪器 | 第62-63页 |
| ·实验方法 | 第63-66页 |
| ·样品制备 | 第63页 |
| ·沙蚕的冷冻干燥 | 第63页 |
| ·沙蚕提取物的制备 | 第63页 |
| ·剂量设计与样品溶液配制 | 第63页 |
| ·抗疲劳试验 | 第63-64页 |
| ·对小鼠转棒试验的影响 | 第63-64页 |
| ·对小鼠游泳耐力的影响 | 第64页 |
| ·免疫调节作用 | 第64-65页 |
| ·二硝基氟苯(DNFB)诱导迟发型变态反应(DTH) | 第64页 |
| ·小鼠碳廓清试验和免疫器官/体重比值测定 | 第64-65页 |
| ·血清溶血素的测定 | 第65页 |
| ·ConA诱导的小鼠脾淋巴细胞转化试验 | 第65页 |
| ·抗炎作用 | 第65-66页 |
| ·抗哮喘作用(离体试验) | 第66页 |
| ·数据处理 | 第66页 |
| ·结果与讨论 | 第66-71页 |
| ·小鼠抗疲劳实验 | 第66-67页 |
| ·小鼠转棒试验 | 第66-67页 |
| ·小鼠负重游泳试验 | 第67页 |
| ·免疫调节作用 | 第67-69页 |
| ·小鼠迟发型变态反应(只有2种样品) | 第67-68页 |
| ·小鼠碳廓清试验和免疫器官/体重比值测定 | 第68页 |
| ·血清溶血素的测定 | 第68-69页 |
| ·小鼠脾淋巴细胞转化试验 | 第69页 |
| ·抗炎作用 | 第69-70页 |
| ·抗哮喘作用 | 第70-71页 |
| ·小结 | 第71-72页 |
| 结论 | 第72-73页 |
| 建议 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 个人简历 | 第82页 |
