| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 符号说明 | 第14-15页 |
| 第一部分 文献综述 | 第15-25页 |
| 1 GLP-2的合成及代谢 | 第15-17页 |
| 2 GLP-2在不同动物中的研究 | 第17-21页 |
| ·GLP-2在啮齿类动物中的研究进展 | 第17-19页 |
| ·GLP-2在仔猪上的研究进展 | 第19-20页 |
| ·GLP-2在人体内的研究进展 | 第20-21页 |
| ·其他 | 第21页 |
| 3 GLP-2的长效化应用 | 第21-23页 |
| ·DPP-Ⅳ抑制剂 | 第21-22页 |
| ·GLP-2的改性及给药系统 | 第22-23页 |
| 4 存在问题及本研究的目的意义 | 第23-25页 |
| ·存在问题 | 第23页 |
| ·本研究的目的 | 第23-24页 |
| ·本研究意义 | 第24-25页 |
| 第二部分 pGLP-2微球的制备 | 第25-36页 |
| 1. 材料与方法 | 第25-27页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·主要试剂及药品 | 第25-26页 |
| ·试验设计 | 第26-27页 |
| 2. 结果 | 第27-31页 |
| ·W/O/W法与S/O/W法制备的GLP-2微球比较 | 第27-28页 |
| ·S/O/W法制备GLP-2微球的工艺优化 | 第28-31页 |
| ·NaCl与PEG对微球粒径包封率及释放特征的影响 | 第31页 |
| 3. 讨论 | 第31-35页 |
| 4. 小结 | 第35-36页 |
| 第三部分 pGLP-2对DSS诱导结肠炎小鼠损伤修复的研究 | 第36-47页 |
| 1 材料与方法 | 第36-39页 |
| ·主要试剂 | 第36页 |
| ·试验动物 | 第36页 |
| ·微球制备 | 第36页 |
| ·试验设计 | 第36-37页 |
| ·样品采集 | 第37页 |
| ·肠道组织学观察及炎性评分 | 第37页 |
| ·血液DAO及结肠MPO的测定 | 第37-38页 |
| ·结肠RNA提取及RT-PCR分析 | 第38页 |
| ·数据统计分析 | 第38-39页 |
| 2 结果 | 第39-42页 |
| ·小鼠行为及精神状态 | 第39页 |
| ·表观生长指标 | 第39页 |
| ·十二指肠、结肠肠道形态学及结肠炎性评分 | 第39-41页 |
| ·血液DAO水平及结肠MPO活性 | 第41页 |
| ·结肠紧密连接蛋白及炎性因子相关基因表达量分析 | 第41-42页 |
| 3 讨论 | 第42-46页 |
| 4 小结 | 第46-47页 |
| 第四部分 pGLP-2微球对LPS诱导断奶仔猪肠道损伤的保护作用 | 第47-56页 |
| 1 材料与方法 | 第47-49页 |
| ·主要试剂 | 第47页 |
| ·微球的制备 | 第47页 |
| ·试验设计 | 第47-48页 |
| ·样品采集 | 第48页 |
| ·血液指标的测定 | 第48页 |
| ·肠道形态的观测 | 第48页 |
| ·十二指肠、空肠粘膜RNA提取及RT-PCR分析 | 第48-49页 |
| ·数据统计与分析 | 第49页 |
| 2 结果 | 第49-52页 |
| ·仔猪行为观察 | 第49页 |
| ·pGLP-2微球对断奶仔猪肠道形态的影响 | 第49-50页 |
| ·pGLP-2微球对注射LPS前后血液生化指标的影响 | 第50-51页 |
| ·十二指肠、空肠紧密连接蛋白及炎性因子相关基因表达量分析 | 第51-52页 |
| 3 讨论 | 第52-55页 |
| 4 小结 | 第55-56页 |
| 全文总结 | 第56-57页 |
| 1 全文结论 | 第56页 |
| 2 展望 | 第56-57页 |
| 创新点 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第71-72页 |
