| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 第一章 研究意义 | 第9-10页 |
| ·文昌鱼的研究 | 第9页 |
| ·DMRT 基因家族的研究 | 第9页 |
| ·结论 | 第9-10页 |
| 第二章 文献综述 | 第10-22页 |
| ·DMRT 基因家族的基本结构特征 | 第10-13页 |
| ·DMRT 基因的功能研究 | 第13-15页 |
| ·保守性 | 第13-14页 |
| ·差异性 | 第14-15页 |
| ·除性别决定以外其他功能研究 | 第15页 |
| ·作用机理方面的研究 | 第15-16页 |
| ·文昌鱼的研究 | 第16-21页 |
| ·文昌鱼的种类与分布 | 第16-17页 |
| ·文昌鱼的饲养 | 第17-18页 |
| ·文昌鱼的繁殖 | 第18-19页 |
| ·影响文昌鱼繁殖的因素 | 第19-20页 |
| ·卵的收集与幼体的饲养 | 第20-21页 |
| ·小结 | 第21-22页 |
| 第三章 文昌鱼的室内饲养 | 第22-24页 |
| ·实验材料、试剂与仪器 | 第22页 |
| ·实验材料、试剂 | 第22页 |
| ·试验仪器、用具 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-23页 |
| ·讨论 | 第23-24页 |
| 第四章 DMRT2 基因 cDNA 序列的获取 | 第24-38页 |
| ·材料与试剂 | 第24-26页 |
| ·试验材料 | 第24页 |
| ·网络资源及软件 | 第24-25页 |
| ·主要试剂盒及试剂 | 第25页 |
| ·主要试剂盒 | 第25页 |
| ·主要试剂 | 第25页 |
| ·主要仪器设备 | 第25-26页 |
| ·cDNA 保守序列的获取 | 第26-28页 |
| ·文昌鱼性腺 RNA 的提取 | 第26页 |
| ·RNA 反转录获得 cDNA | 第26-27页 |
| ·引物的设计 | 第27页 |
| ·PCR 反应体系 | 第27页 |
| ·PCR 条件优化 | 第27-28页 |
| ·PCR 反应 | 第28页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 PCR 反应扩增结果 | 第28页 |
| ·RACE 方法获取 DMRT2 基因的 cDNA 全长 | 第28-31页 |
| ·雌雄鳃组织总 RNA 的提取 | 第28-29页 |
| ·RACE 引物的设计 | 第29页 |
| ·cDNA 第一链合成 | 第29页 |
| ·5’RACE 和 3’RACE | 第29-31页 |
| ·实验结果与分析 | 第31-38页 |
| ·RNA 提取 | 第31页 |
| ·PCR 电泳结果 | 第31-33页 |
| ·测序结果与分析 | 第33-38页 |
| ·保守序列结果分析 | 第33-34页 |
| ·RACE 结果比对分析 | 第34-38页 |
| 第五章 DMRT2 基因的 DNA 序列获取 | 第38-51页 |
| ·试剂与试剂盒 | 第39-40页 |
| ·实验方法 | 第40-46页 |
| ·DNA 片段的获取 | 第40-42页 |
| ·DNA 的提取 | 第40-41页 |
| ·引物设计及 PCR 优化 | 第41-42页 |
| ·3’端和 5’端侧翼序列的获取 | 第42-46页 |
| ·引物的设计 | 第42页 |
| ·染色体步移 | 第42-45页 |
| ·目的条带切胶回收 | 第45-46页 |
| ·实验结果 | 第46-51页 |
| ·DNA 片段结果 | 第46-47页 |
| ·染色体步移结果 | 第47-51页 |
| 第六章 DMRT2 基因的组织表达研究 | 第51-61页 |
| ·试剂与仪器 | 第51-54页 |
| ·试剂的配制 | 第51-53页 |
| ·主要试剂盒 | 第53页 |
| ·主要仪器、器皿 | 第53-54页 |
| ·实验方法 | 第54-58页 |
| ·地高辛标记的探针制备 | 第54-55页 |
| ·制备文昌鱼切片 | 第55-57页 |
| ·切片的脱蜡复水 | 第57页 |
| ·探针杂交与显色 | 第57-58页 |
| ·实验结果 | 第58-59页 |
| ·结果验证 | 第59页 |
| ·讨论 | 第59-61页 |
| 第七章 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 发表文章目录 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |