| 中文摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 1 前言 | 第14-51页 |
| ·植物体细胞胚胎发生及其意义 | 第14-19页 |
| ·植物细胞的全能性 | 第14页 |
| ·体细胞胚胎发生的历史 | 第14-16页 |
| ·体细胞胚胎发生的意义 | 第16-19页 |
| ·植物体细胞胚胎发生的研究进展 | 第19-26页 |
| ·体细胞胚的诱导过程及其特点 | 第19-21页 |
| ·体细胞胚的形态发生 | 第21-23页 |
| ·拟南芥体细胞胚胎发生过程中干细胞的形成 | 第23-26页 |
| ·生长素对体细胞胚胎发生的调节作用 | 第26-34页 |
| ·生长素的合成 | 第26-29页 |
| ·生长素的运输及信号转导 | 第29-31页 |
| ·生长素对拟南芥体细胞胚胎发生的调节作用 | 第31-34页 |
| ·乙烯对植物生长发育的调节作用 | 第34-49页 |
| ·乙烯的生物合成 | 第35-37页 |
| ·乙烯的信号转导 | 第37-40页 |
| ·生长素与乙烯的互作 | 第40-48页 |
| ·在植物根的伸长过程中乙烯与生长素的协同作用 | 第41-45页 |
| ·在植物侧根发育过程中乙烯与生长素的拮抗作用 | 第45-48页 |
| ·乙烯对体细胞胚胎发生的调节作用 | 第48-49页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第49-51页 |
| 2 材料与方法 | 第51-70页 |
| ·实验材料 | 第51-52页 |
| ·植物材料 | 第51页 |
| ·菌株 | 第51页 |
| ·生化试剂 | 第51-52页 |
| ·实验方法 | 第52-70页 |
| ·拟南芥的种植 | 第52页 |
| ·拟南芥体细胞胚的诱导 | 第52-53页 |
| ·植物组织总RNA的提取 | 第53-54页 |
| ·反转录cDNA第一链的合成 | 第54-55页 |
| ·实时定量PCR分析 | 第55-56页 |
| ·植物基因组DNA的提取及纯化 | 第56-57页 |
| ·PCR扩增 | 第57页 |
| ·DNA序列测定 | 第57-58页 |
| ·拟南芥突变体及转基因株系的鉴定 | 第58-59页 |
| ·原位杂交分析 | 第59-66页 |
| ·GUS染色分析 | 第66页 |
| ·GUS染色后的石蜡切片 | 第66-67页 |
| ·共聚焦显微镜观察和图像处理 | 第67页 |
| ·愈伤组织中IAA水平的检测 | 第67-68页 |
| ·愈伤组织中乙烯释放量的实时测定 | 第68页 |
| ·基因芯片分析 | 第68页 |
| ·化学试剂处理 | 第68-70页 |
| 3 结果与分析 | 第70-94页 |
| ·YUC基因介导的生长素的合成对于拟南芥体细胞胚胎发生是必需的 | 第70-74页 |
| ·体细胞胚胎发生体系 | 第70页 |
| ·体细胞胚胎发生过程中YUC基因表达上调 | 第70-71页 |
| ·体细胞胚胎发生过程中内源生长素含量上调 | 第71-72页 |
| ·体细胞胚胎发生过程中YUC基因的时空表达模式 | 第72-73页 |
| ·YUC基因的表达对于体细胞胚胎发生是必需的 | 第73-74页 |
| ·体细胞胚胎发生过程的转录组基因芯片分析 | 第74-80页 |
| ·体细胞胚胎发生过程中乙烯合成下调 | 第80-81页 |
| ·乙烯负调节体细胞胚胎发生 | 第81-83页 |
| ·过量乙烯抑制了YUC基因的表达破坏了生长素的区域性分布 | 第83-86页 |
| ·过量乙烯抑制了YUC基因的表达 | 第83-84页 |
| ·过量乙烯破坏了生长素合成相关基因YUC的时空表达模式 | 第84-85页 |
| ·过量乙烯破坏了生长素的响应模式 | 第85-86页 |
| ·过量的内源乙烯合成通过抑制YUC基因的表达抑制体细胞胚胎发生 | 第86-89页 |
| ·组成型乙烯信号转导通过抑制YUC基因的表达抑制体细胞胚胎发生 | 第89-92页 |
| ·抑制乙烯的合成和信号转导并不影响体细胞胚胎发生 | 第92-94页 |
| 4 讨论 | 第94-97页 |
| 5 结论 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第116页 |
