| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写 | 第7-8页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-16页 |
| ·前言 | 第10页 |
| ·SELEX 技术简介 | 第10-11页 |
| ·核酸适配体（aptamer）简介 | 第11-12页 |
| ·转录因子 FoxM1 简介 | 第12-13页 |
| ·分子信标简介 | 第13-14页 |
| ·本文构思 | 第14-16页 |
| ·研究目的 | 第14页 |
| ·研究方法及技术 | 第14-16页 |
| 第2章 GST-FoxM1-220-335 融合蛋白的纯化 | 第16-22页 |
| ·前言 | 第16-17页 |
| ·实验材料 | 第17-18页 |
| ·实验方法 | 第18-19页 |
| ·重组质粒的转化与小量提取 | 第18-19页 |
| ·重组质粒的酶切与鉴定 | 第19页 |
| ·GST-FoxM1-220-335 融合蛋白的纯化 | 第19页 |
| ·实验结果 | 第19-21页 |
| ·质粒的转化和鉴定 | 第19-20页 |
| ·GST-FoxM1-220-335 融合蛋白的纯化 | 第20-21页 |
| ·讨论 | 第21-22页 |
| 第3章 转录因子 FoxM1 核酸探针的构建 | 第22-38页 |
| ·前言 | 第22-23页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-31页 |
| ·SELEX 文库的构建及其引物的设计 | 第24-25页 |
| ·转录因子 FoxM1 核酸适配体的筛选 | 第25-27页 |
| ·克隆测序及二级结构分析 | 第27页 |
| ·核酸适配体与 FoxM1 结合能力分析 | 第27-31页 |
| ·实验结果 | 第31-36页 |
| ·转录因子 FoxM1 核酸适配体的筛选 | 第31-33页 |
| ·核酸适配体与 FoxM1 结合能力分析 | 第33-36页 |
| ·讨论 | 第36-38页 |
| 第4章 基于微球富集的核酸适配子体外检测转录因子转录因子 FoxM1 | 第38-43页 |
| ·前言 | 第38-39页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-41页 |
| ·核酸探针的设计 | 第39-40页 |
| ·实验条件优化 | 第40页 |
| ·基于微球富集技术利用核酸适配子体外检测转录因子转录因子 FoxM1 | 第40-41页 |
| ·实验结果 | 第41-42页 |
| ·实验条件优化 | 第41-42页 |
| ·基于微球富集核酸适配子体外检测靶蛋白 GST-FoxM1-220-335 | 第42页 |
| ·讨论 | 第42-43页 |
| 结论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 附录A 攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第49-50页 |
| 附录B 分子信标用于脱氧核酶切割产物的快速检测 | 第50-55页 |
| B.1 前言 | 第50页 |
| B.2 实验材料 | 第50-51页 |
| B.3 实验方法 | 第51-52页 |
| B.3.1 人工合成的脱氧核酶酶切产物的检测 | 第51-52页 |
| B.3.2 脱氧核酶模拟的 HCV-RNA 酶切产物的检测 | 第52页 |
| B.4 实验结果 | 第52-54页 |
| B.4.1 人工合成的脱氧核酶酶切产物的检测 | 第52-53页 |
| B.4.2 脱氧核酶模拟的 HCV-RNA 酶切产物的检测 | 第53-54页 |
| B.5 讨论 | 第54-55页 |
| 附录C 常用缓冲液和试剂配方 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
