| 前言 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-10页 |
| Abstract | 第10-20页 |
| 第1章 绪论 | 第20-42页 |
| ·心肌纤维化研究 | 第21-26页 |
| ·心脏纤维化概述 | 第22页 |
| ·心肌纤维化时胶原代谢改变 | 第22-26页 |
| ·心肌纤维化的分子生物学机制 | 第26-36页 |
| ·PKC 家族 | 第27-30页 |
| ·NOS 家族 | 第30页 |
| ·HSP 家族 | 第30-31页 |
| ·MAPK 信号 | 第31-32页 |
| ·ROS | 第32-36页 |
| ·预防和逆转心肌纤维化途径 | 第36-38页 |
| ·阻断肾素-血管紧张素-醛固酮系统 | 第36-37页 |
| ·抗氧化剂 | 第37页 |
| ·中医药 | 第37页 |
| ·阻断肾上腺素受体 | 第37页 |
| ·钙拮抗剂 | 第37页 |
| ·抑制脯氨酰羟化酶 | 第37页 |
| ·抑制基质金属蛋白酶 | 第37页 |
| ·内皮素受体阻断剂 | 第37-38页 |
| ·牛磺酸抑制和逆转心肌纤维化的研究进展 | 第38-39页 |
| ·牛磺酸的抗纤维化效应 | 第38页 |
| ·牛磺酸的抗炎效应 | 第38-39页 |
| ·牛磺酸抗炎抗纤维化效应的分子机制 | 第39页 |
| ·本文的主要研究目的、内容和意义 | 第39-42页 |
| 第2章 牛磺酸抑制 ISO 诱导 MF 作用的在体实验研究 | 第42-52页 |
| ·实验的材料 | 第42-43页 |
| ·实验的药品与试剂 | 第42页 |
| ·实验动物 | 第42页 |
| ·仪器 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43-45页 |
| ·Iso 造模、分组与给药 | 第43页 |
| ·实验标本的制备 | 第43页 |
| ·实验指标的检测 | 第43-45页 |
| ·统计学处理 | 第45-46页 |
| ·实验结果 | 第46-50页 |
| ·Tau 对心脏重量指数的影响 | 第46页 |
| ·Tau 对 Hyp 含量的影响 | 第46页 |
| ·Tau 对 Iso 诱导 MF 时心肌组织 HE 染色的影响 | 第46-47页 |
| ·Tau 对心肌组织 SOD 活性和 MDA 含量的影响 | 第47-48页 |
| ·免疫组织化学染色检测 Tau 对心肌组织中 TGF-β1的影响 | 第48页 |
| ·Western blot 检测 Tau 对 PKCα在胞膜表达的影响 | 第48-49页 |
| ·Western blot 检测 Tau 对心肌组织中 iNOS 蛋白在胞浆表达的影响 | 第49-50页 |
| ·小结 | 第50-52页 |
| 第3章 牛磺酸抑制 MYOFBS 增殖实验的初步研究 | 第52-64页 |
| ·实验材料 | 第52-55页 |
| ·药品与试剂 | 第52-53页 |
| ·主要溶液的配制 | 第53-54页 |
| ·实验动物 | 第54页 |
| ·主要仪器 | 第54-55页 |
| ·实验方法 | 第55-58页 |
| ·MyoFbs 的分离和培养 | 第55页 |
| ·分组及给药 | 第55-56页 |
| ·观察细胞形态 | 第56页 |
| ·检测 myoFbs 的增殖力 | 第56页 |
| ·I 型胶原、III 型胶原含量的测定（ELISA） | 第56页 |
| ·CTGF 和 TGF-β1蛋白的测定 (ELISA 法) | 第56页 |
| ·Tau 对 myoFbs 的 iNOS 活力及 NO 含量的影响 | 第56-57页 |
| ·采用流式细胞仪分析 myoFbs 周期的分布 | 第57页 |
| ·Western blot 检测 p-PKCα蛋白的表达 | 第57-58页 |
| ·流式细胞仪检测 p-ERK1/2 蛋白的表达 | 第58页 |
| ·统计学分析 | 第58页 |
| ·结果 | 第58-63页 |
| ·MyoFbs 的细胞鉴定 | 第58-59页 |
| ·Tau 对 myoFbs 形态学的影响 | 第59页 |
| ·Tau 对 myoFbs 增殖的影响 | 第59-60页 |
| ·Tau 对 myoFbs 分泌 I 和 III 型胶原含量的影响 | 第60页 |
| ·Tau 对 TGF-β1和 CTGF 蛋白含量的影响 | 第60页 |
| ·Tau 对 myoFbs 的 iNOS 活力及 NO 含量的影响 | 第60-61页 |
| ·流式细胞术检测 myoFbs 周期分布 | 第61页 |
| ·流式细胞仪检测 p-ERK1/2 在核的蛋白表达 | 第61-62页 |
| ·Western blotting 检测 p-PKCα蛋白的表达 | 第62-63页 |
| ·小结 | 第63-64页 |
| 第4章 TAU通过 PKCΑ-INOS 途径抑制 MYOFBS 的增殖 | 第64-76页 |
| ·实验材料 | 第64页 |
| ·实验药品与试剂 | 第64页 |
| ·实验动物 | 第64页 |
| ·实验仪器 | 第64页 |
| ·实验的方法 | 第64-67页 |
| ·大乳鼠 myoFbs 的培养 | 第64页 |
| ·实验细胞的分组 | 第64页 |
| ·MTT 法检测 myoFbs 增殖活力 | 第64-65页 |
| ·流式细胞术对 myoFbs 周期分布的检测 | 第65页 |
| ·Tau 对细胞培养液中 iNOS 活力及 NO 含量的影响 | 第65页 |
| ·免疫细胞化学染色检测 PKCα和 iNOS 蛋白的表达 | 第65-66页 |
| ·荧光共聚焦检测 p-PKCα和 iNOS 蛋白的表达 | 第66页 |
| ·Western blot 检测 p-PKCα和 iNOS 蛋白的表达 | 第66-67页 |
| ·统计学进行分析 | 第67页 |
| ·实验结果 | 第67-74页 |
| ·MTT 法检测 myoFbs 增殖活力 | 第67页 |
| ·流式细胞仪检测 myoFbs 周期的分布 | 第67-68页 |
| ·Tau 和 D4681 对 myoFbs 的 iNOS 活力及 NO 含量的影响 | 第68-69页 |
| ·免疫细胞化学染色和荧光共聚焦检测 PKCα的膜转位及蛋白的表达 | 第69-70页 |
| ·荧光共聚焦和免疫化学染色检测胞浆中 iNOS 的表达 | 第70-71页 |
| ·Western blott 检测 p-PKCα和 iNOS 蛋白的表达 | 第71-74页 |
| ·小结 | 第74-76页 |
| 第5章 TAU 通过 PKCΑ-ERK1/2 途径抑制 MYOFBS 的增殖 | 第76-86页 |
| ·实验的材料与方法 | 第76页 |
| ·实验药品与试剂 | 第76页 |
| ·实验动物 | 第76页 |
| ·实验仪器 | 第76页 |
| ·实验方法 | 第76-78页 |
| ·Wistar 乳鼠 myoFbs 分离与培养 | 第76页 |
| ·实验分组 | 第76-77页 |
| ·MTT 法检测细胞存活率 | 第77页 |
| ·流式细胞术检测 myoFbs 周期分布 | 第77页 |
| ·免疫细胞化学染色检测 p-PKCα和 p-ERK1/2 蛋白的表达 | 第77-78页 |
| ·荧光共聚焦检测 p-PKCα膜转位和 p-ERK1/2 的核转位及表达 | 第78页 |
| ·Western blot 检测 myoFbs 内的 p-PKCα和 p-ERK1/2 的表达 | 第78页 |
| ·统计学分析 | 第78页 |
| ·实验结果 | 第78-84页 |
| ·MTT 检测 D4681 和 PD98095 对 myoFbs 生长及增殖率的影响 | 第78-79页 |
| ·D4681 和 PD98095 对 myoFbs 周期分布的影响 | 第79页 |
| ·免疫细胞化学染色检测 p-PKCα和 p-ERK1/2 的表达 | 第79-81页 |
| ·荧光共聚焦检测 p-PKCα和 p-ERK1/2 的表达 | 第81-82页 |
| ·Western blot 检测 p-PKCα和 p-ERK1/2 表达 | 第82-84页 |
| ·小结 | 第84-86页 |
| 第6章 TAU通过 ROS 途径抑制 MYOFBS 的增殖 | 第86-92页 |
| ·实验材料与方法 | 第86页 |
| ·实验试剂与药品 | 第86页 |
| ·实验动物 | 第86页 |
| ·实验仪器 | 第86页 |
| ·实验方法 | 第86-87页 |
| ·Wistar 乳鼠 myoFbs 培养 | 第86页 |
| ·实验分组 | 第86页 |
| ·MTT 法检测细胞存活率 | 第86页 |
| ·MyoFbs 内·OH 含量测定： | 第86页 |
| ·MyoFbs内ROS的测定 | 第86-87页 |
| ·免疫细胞化学染色检测 PKCα膜转位和表达 | 第87页 |
| ·荧光共聚焦检测 p-PKCα膜转位和表达 | 第87页 |
| ·统计学分析 | 第87页 |
| ·实验结果 | 第87-90页 |
| ·小结 | 第90-92页 |
| 第7章 讨论 | 第92-106页 |
| 第8章 结论 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-125页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126页 |
