| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略语表 | 第12-14页 |
| 1.文献综述 | 第14-53页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120的异形胞发育调控 | 第14-38页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120简介 | 第14-15页 |
| ·异形胞的特点 | 第15-16页 |
| ·异形胞的发育 | 第16-27页 |
| ·异形胞发育的起始 | 第16-19页 |
| ·异形胞发育的早期调控和模式建立 | 第19-23页 |
| ·异形胞发育早期的关键基因 | 第19-21页 |
| ·异形胞发育的调控网络和模式形成 | 第21-23页 |
| ·参与异形胞分化的其它基因 | 第23-24页 |
| ·其它影响异形胞分化模式的因素 | 第24-25页 |
| ·组蛋白类似蛋白HU在异形胞分化过程中可能的作用 | 第25-27页 |
| ·大肠杆菌中的HU蛋白 | 第25-26页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120中的HU蛋白 | 第26-27页 |
| ·异形胞包被形成 | 第27-33页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞特异性多糖合成相关基因 | 第28页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞特异性糖脂成分及合成途经 | 第28-33页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞特异性糖脂成分 | 第28-29页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞特异性糖脂合成途径 | 第29-30页 |
| ·异形胞特异性糖脂合成及调控相关基因 | 第30-33页 |
| ·固氮酶行使功能 | 第33-38页 |
| ·固氮酶系统 | 第34-35页 |
| ·异形胞特异性染色体重排 | 第35-36页 |
| ·固氮酶基因表达的调控 | 第36-38页 |
| ·适合固氮酶系统行使功能的环境 | 第38页 |
| ·信号传导系统简介 | 第38-44页 |
| ·双组分信号传导系统 | 第39-42页 |
| ·组蛋白激酶 | 第40-41页 |
| ·反应调控蛋白 | 第41-42页 |
| ·丝氨酸/苏氨酸和酪氨酸激酶与蛋白磷酸酶 | 第42-44页 |
| ·丝氨酸/苏氨酸和酪氨酸激酶 | 第42-43页 |
| ·蛋白磷酸酶 | 第43-44页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120中的信号传导系统 | 第44-51页 |
| ·蓝细菌中的信号传导系统 | 第44-46页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120中的信号传导系统简介 | 第46-47页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120中的双组分信号转导系统 | 第47页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120中的丝氨酸/苏氨酸和酪氨酸激酶与蛋白磷酸酶 | 第47-51页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120中的丝氨酸/苏氨酸和酪氨酸激酶 | 第47-49页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120中的蛋白磷酸酶 | 第49-50页 |
| ·HstK家族 | 第50-51页 |
| ·研究目的与意义 | 第51-53页 |
| 2.材料与方法 | 第53-70页 |
| ·菌株和质粒 | 第53页 |
| ·培养基配方以及培养条件 | 第53-54页 |
| ·主要分子生物学试剂 | 第54-55页 |
| ·实验方法 | 第55-70页 |
| ·质粒DNA的制备及其基本操作 | 第55页 |
| ·质粒DNA的其它有关操作 | 第55页 |
| ·粘性末端的平端化 | 第55页 |
| ·转化 | 第55-56页 |
| ·大肠杆菌的常规转化 | 第55-56页 |
| ·大肠杆菌表达宿主细胞的转化 | 第56页 |
| ·大肠杆菌超表达外源蛋白质的纯化 | 第56-57页 |
| ·EMSA(Electrophoretic Mobility Shift Assay) | 第57-59页 |
| ·鱼腥蓝细菌异形胞的诱导 | 第59页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120总DNA的抽提 | 第59-60页 |
| ·蓝细菌结合转移(三亲本杂交) | 第60-62页 |
| ·接合转移转化子的验证 | 第62页 |
| ·固氮酶活性的测定 | 第62-63页 |
| ·鱼腥蓝细菌RNA提取和纯化 | 第63-64页 |
| ·RT-PCR和Real-Time RT-PCR | 第64-65页 |
| ·RNA定量和浓度调整 | 第64页 |
| ·半定量反转录PCR(RT-PCR) | 第64-65页 |
| ·实时定量反转录PCR(Real-Time RT-PCR) | 第65页 |
| ·鱼腥蓝细菌PCC 7120细胞中蛋白质的提取 | 第65-66页 |
| ·蛋白定量——BradFord法 | 第66-67页 |
| ·Western Blotting | 第67-70页 |
| 3 结果与分析 | 第70-106页 |
| ·pkn44和pkn30参与了鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞特异性糖脂1-(α-D-葡萄糖)-3-酮基-25-二十六烷醇的合成 | 第70-92页 |
| ·突变体D4.3 | 第70-71页 |
| ·突变体D4.3在缺氮环境中的生长曲线和异形胞发育 | 第71-73页 |
| ·突变体D4.3缺氮诱导后HetR表达量的变化 | 第73-74页 |
| ·突变体D4.3在不同条件下的固氮酶活性 | 第74-75页 |
| ·突变体D4.3中nifD因子重排的检测 | 第75-76页 |
| ·突变体D4.3中不同条件下NifH的表达水平 | 第76-77页 |
| ·突变体D4.3在不同条件下nifH的转录水平 | 第77-79页 |
| ·突变体D4.3的超微结构 | 第79-80页 |
| ·突变体D4.3异形胞特异性糖脂分析 | 第80-81页 |
| ·突变体D4.3中糖脂合成相关基因的转录 | 第81-83页 |
| ·突变体D4.3中多糖合成相关基因hepK和hepA的转录 | 第83-84页 |
| ·对突变体D4.3的遗传互补 | 第84-92页 |
| ·PrpJ2参与了鱼腥蓝细菌PCC 7120的异形胞分化 | 第92-97页 |
| ·NtcA蛋白对prpJ2启动子片段的结合 | 第92-95页 |
| ·NtcA蛋白质的纯化 | 第92-94页 |
| ·NtcA蛋白对prpJ2启动子片段的结合 | 第94-95页 |
| ·prpJ2在缺氮诱导后的转录水平 | 第95-96页 |
| ·S19/S20中hetR的转录水平 | 第96-97页 |
| ·组蛋白类似蛋白HU参与了鱼腥蓝细菌PCC 7120的异形胞分化 | 第97-106页 |
| ·组蛋白类似蛋白HU(HanA)在鱼腥蓝细菌PCC 7120中的定位 | 第97-98页 |
| ·异位表达HanA对异形胞分化的影响 | 第98-101页 |
| ·NtcA蛋白对hanA启动子片段的结合 | 第101页 |
| ·hanA在缺氮诱导后的转录水平 | 第101-102页 |
| ·NtcA与hanA启动子相互作用的体外实验 | 第102-106页 |
| 4 讨论与展望 | 第106-112页 |
| ·HstK家族的功能 | 第106-107页 |
| ·异形胞特异性糖脂合成的调控 | 第107-109页 |
| ·PrpJ2在异形胞的早期发育中的作用 | 第109页 |
| ·组蛋白类似蛋白HU在异形胞早期发育中所受的调控 | 第109-111页 |
| ·小结 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-130页 |
| 附录 本研究所用引物 | 第130-136页 |
| 博士期间主要学术成果 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138页 |
