| 第一章 前言 | 第1-22页 |
| 1．1．动物中NO的研究现状 | 第7-13页 |
| 1．1．1．NO生理功能的发现 | 第7-8页 |
| 1．1．2．NO的化学性质及生物学行为 | 第8页 |
| 1．1．3．动物中NO的产生与一氧化氮合成酶 | 第8-9页 |
| 1．1．4．动物中NO的生物学作用及作用机理 | 第9-11页 |
| 1．1．5．动物中NO的信号转导 | 第11-13页 |
| 1．2．植物中NO的研究进展 | 第13-20页 |
| 1．2．1．植物中NO的来源 | 第13-14页 |
| 1．2．2．NO与植物的生长发育 | 第14-17页 |
| 1．2．3．植物中NO的信号转导 | 第17-20页 |
| 1．2．4．展望 | 第20页 |
| 1．3．论文的理论基础及设计方案 | 第20-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-32页 |
| 2．1．试验材料及设备 | 第22页 |
| 2．2．试验方法 | 第22-32页 |
| 2．2．1．组织培养和水培的步骤 | 第22-25页 |
| 2．2．2．细胞分裂相的统计步骤 | 第25页 |
| 2．2．3．流式细胞术实验步骤 | 第25-26页 |
| 2．2．4．水稻初生根总RNA的提取 | 第26-27页 |
| 2．2．5．水稻初生根总RNA的逆转录 | 第27-28页 |
| 2．2．6．实时定量PCR反应中各基因的引物设计及标准曲线的生成 | 第28-32页 |
| 第三章 结果与分析 | 第32-48页 |
| 3．1．SNP处理对水稻初生根形态的影响 | 第32-36页 |
| 3．1．1．SNP处理后的水稻初生根形态观察 | 第32-34页 |
| 3．1．2．SNP处理后水稻初生根长度变化的统计分析 | 第34-35页 |
| 3．1．3．结果分析 | 第35-36页 |
| 3．2．NO对水稻初生根细胞周期进程的影响 | 第36-41页 |
| 3．2．1．SNP处理对水稻初生根细胞分裂相的影响 | 第36-37页 |
| 3．2．2．NO对水稻细胞周期影响的流式细胞术分析 | 第37-40页 |
| 3．2．3 结果分析 | 第40-41页 |
| 3．3．NO对水稻细胞周期特异性表达基因表达的影响 | 第41-48页 |
| 3．3．1．水稻细胞周期特异性表达基因cdc2Os-2等的介绍 | 第41页 |
| 3．3．2．实时定量PCR技术测定基因表达情况 | 第41-46页 |
| 3．3．3．结果分析 | 第46-48页 |
| 第四章 讨论 | 第48-53页 |
| 4．1．NO与细胞周期关系的研究 | 第48-50页 |
| 4．2．NO对DNA转录和蛋白合成影响的研究 | 第50-51页 |
| 4．3．论文小结及展望 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 附录Ⅰ SNP处理对水稻初生根长度变化的数据统计表(单位：CM) | 第60-62页 |
| 附录Ⅱ 水稻细胞周期特异性表达基因序列 | 第62-65页 |
| 附录Ⅲ 硕士期间所发表论文 | 第65-66页 |
| 附录Ⅳ 缩略词表 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
