| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-21页 |
| 1．1 离子束生物工程学研究进展 | 第8-17页 |
| 1．1．1 离子束作物育种概况 | 第9-12页 |
| 1．1．2 离子束注入获得高产菌株 | 第12-15页 |
| 1．1．3 离子束介导植物、微生物遗传转化(离子束辅助基因群转移) | 第15-17页 |
| 1．1．4 离子束对生物体局部和整体的影响 | 第17页 |
| 1．2 离子束注入的生物学机理研究 | 第17-21页 |
| 1．2．1 离子束改变生物表面电性 | 第18页 |
| 1．2．2 离子束的溅射效应和对细胞的蚀刻作用 | 第18-19页 |
| 1．2．3 低能作用生物材料的浓度和深度 | 第19页 |
| 1．2．4 产生自由基 | 第19-20页 |
| 1．2．5 离子束诱变的细胞近旁效应 | 第20-21页 |
| 2 离子注入设备与PurR~S背景 | 第21-26页 |
| 2．1 离子注入设备简介 | 第21-24页 |
| 2．1．1 工作原理 | 第21-22页 |
| 2．1．2 工作环境 | 第22页 |
| 2．1．3 动力要求 | 第22页 |
| 2．1．4 技术指标 | 第22页 |
| 2．1．5 离子源 | 第22-24页 |
| 2．2 关于鼠伤寒沙门氏菌类PurR超阻遏突变体及 PUR box元件 | 第24-26页 |
| 2．2．1 关于鼠伤寒沙门氏菌类purR超阻遏突变体 | 第24-25页 |
| 2．2．2 关于 PUR box元件 | 第25-26页 |
| 3 类超阻遏突变体purR~S的低能氮离子束诱变及突变体的分离 | 第26-41页 |
| 3．1 材料和方法 | 第26-31页 |
| 3．1．1 菌株和噬菌体 | 第26页 |
| 3．1．2 培养基、试剂及仪器 | 第26-28页 |
| 3．1．3 离子束注入purR~S实验 | 第28-31页 |
| 3．2 实验结果 | 第31-38页 |
| 3．2．1 干燥存活率 | 第31页 |
| 3．2．2 诱变剂量的确定 | 第31-32页 |
| 3．2．3 悬浮液 | 第32页 |
| 3．2．4 低能离子束处理中自发突变体的排除和诱发突变体的获得 | 第32-33页 |
| 3．2．5 purR和 PUR box突变体的遗传鉴定 | 第33-38页 |
| 3．3 本章小结 | 第38页 |
| 3．4 讨论 | 第38-41页 |
| 3．4．1 悬浮液 | 第38-39页 |
| 3．4．2 关于注入过程的损伤 | 第39页 |
| 3．4．3 关于马鞍形曲线 | 第39-40页 |
| 3．4．4 获得突变体为诱发突变体的初步证据 | 第40页 |
| 3．4．5 诱变率 | 第40-41页 |
| 4 PURbox诱变体的突变谱分析 | 第41-53页 |
| 4．1 材料和方法 | 第41-45页 |
| 4．1．1 菌株和质粒 | 第41页 |
| 4．1．2 培养基及试剂及主要仪器 | 第41-42页 |
| 4．1．3 引物的设计 | 第42页 |
| 4．1．4 细菌总 DNA的提取 | 第42页 |
| 4．1．5 PCR反应 | 第42-43页 |
| 4．1．6 DEAE纤维素膜法回收 DNA片段 | 第43页 |
| 4．1．7 目的 DNA片段的克隆 | 第43-45页 |
| 4．1．8 DNA核昔酸序列测定 | 第45页 |
| 4．2 结果 | 第45-48页 |
| 4．2．1 诱发突变体 PURbox片段扩增及重组子的酶切鉴定 | 第45页 |
| 4．2．2 诱发突变体突变位点的分析 | 第45-48页 |
| 4．3 小结 | 第48页 |
| 4．4 讨论 | 第48-53页 |
| 4．4．1 诱变突变谱及与随机、适应突变谱的比较 | 第48-50页 |
| 4．4．2 离子束诱变微生物机理的探讨 | 第50-52页 |
| 4．4．3 新问题的提出 | 第52-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 附录 | 第59-60页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 独创性声明 | 第62页 |
| 学位论文版权使用授权书 | 第62页 |
