中文摘要 | 第1-5页 |
英文摘要 | 第5-11页 |
1 绪论 | 第11-18页 |
1.1 秸秆饲料的加工方法概况 | 第11-14页 |
1.2 微生物蛋白饲料研究现状 | 第14-16页 |
1.3 微生物蛋白饲料研究中存在的问题 | 第16页 |
1.4 本论文研究工作及内容简介 | 第16-18页 |
2 预处理对秸秆理化性质的影响 | 第18-31页 |
2.1 秸秆理化性质概述 | 第18-20页 |
2.2 秸秆组分定量分析 | 第20-23页 |
2.2.1 材料和方法 | 第20-22页 |
2.2.2 结果 | 第22-23页 |
2.2.2.1 稻草中各组分分析 | 第22-23页 |
2.2.2.2 氨基酸含量分析 | 第23页 |
2.3 不同预处理方法对秸秆结构的影响 | 第23-31页 |
2.3.1 预处理方法 | 第23-24页 |
2.3.2 分析方法 | 第24页 |
2.3.3 结果与讨论 | 第24-30页 |
2.3.3.1 预处理方法对秸秆组分含量的影响 | 第24-25页 |
2.3.3.2 扫描电镜观察 | 第25-26页 |
2.3.3.3 X-射线衍射测试 | 第26-28页 |
2.3.3.4 红外光谱分析 | 第28-30页 |
本章小结 | 第30-31页 |
3 纤维素酶生产菌发酵条件研究 | 第31-68页 |
3.1 纤维素酶的研究动向 | 第31-32页 |
3.1.1 纤维素酶的组成与分类 | 第31-32页 |
3.1.2 纤维素酶分子结构与功能 | 第32页 |
3.1.3 纤维素酶生产菌 | 第32页 |
3.2 材料和方法 | 第32-37页 |
3.3 结果与讨论 | 第37-68页 |
3.3.1 木霉最佳培养条件的确定 | 第37-39页 |
3.3.2 康宁木霉最佳培养条件的确定 | 第39-42页 |
3.3.3 绿色木霉最佳培养条件的确定 | 第42-44页 |
3.3.4 黑曲霉最佳培养条件的确定 | 第44-46页 |
3.3.5 宇佐美曲霉最佳培养条件的确定 | 第46-48页 |
3.3.6 氮源对真菌酶活力的影响 | 第48-49页 |
3.3.7 含氮量对产酶的影响 | 第49-50页 |
3.3.8 初始pH对酶活的影响 | 第50-51页 |
3.3.9 温度对产酶的影响 | 第51-52页 |
3.3.10 加水量对产酶的影响 | 第52-53页 |
3.3.11 培养方式对酶活力的影响 | 第53-54页 |
3.3.12 麸皮对产酶的影响 | 第54-55页 |
3.3.13 NaCl对酶活力的影响 | 第55页 |
3.3.14 预处理方法对酶活力的影响 | 第55-57页 |
3.3.15 发酵液的酶解得率 | 第57页 |
3.3.16 不同菌株对秸秆纤维的降解情况 | 第57-58页 |
3.3.17 发酵抽提液中糖的色谱分析 | 第58-61页 |
3.3.18 酶水解液中糖的纸层析 | 第61-62页 |
3.3.19 稻草降解后纤维素结晶度分析 | 第62-64页 |
3.3.20 发酵产物酶的种类分析 | 第64-65页 |
3.3.21 活干菌菌株的分离鉴定 | 第65-66页 |
本章小结 | 第66-68页 |
4 纤维素酶提取分离、纯化及性质研究 | 第68-107页 |
4.1 分离方法 | 第68-69页 |
4.2 材料和方法 | 第69-74页 |
4.3 结果与讨论 | 第74-107页 |
4.3.1 黑曲霉纤维素酶分离、纯化曲线 | 第74-75页 |
4.3.2 宇佐美曲霉纤维素酶分离、纯化曲线 | 第75-77页 |
4.3.3 康宁木霉曲霉纤维素酶分离、纯化曲线 | 第77-78页 |
4.3.4 木霉曲霉纤维素酶分离、纯化曲线 | 第78-80页 |
4.3.5 绿色木霉曲霉纤维素酶分离、纯化曲线 | 第80-81页 |
4.3.6 电泳图谱比较 | 第81-82页 |
4.3.7 CMC酶性质研究 | 第82-84页 |
4.3.7.1 CMC酶的最适作用温度 | 第82-83页 |
4.3.7.2 CMC酶最适作用pH值 | 第83页 |
4.3.7.3 CMC酶的热稳定性 | 第83-84页 |
4.3.7.4 CMC酶的pH稳定性 | 第84页 |
4.3.8 CMC酶的紫外光谱分析 | 第84-87页 |
4.3.8.1 木霉CMC酶的紫外光谱 | 第84-85页 |
4.3.8.2 宇佐美曲霉CMC酶的紫外光谱 | 第85页 |
4.3.8.3 康宁木霉CMC酶的紫外光谱 | 第85-86页 |
4.3.8.4 黑曲霉CMC酶的紫外光谱 | 第86-87页 |
4.3.8.5 绿色木霉CMC酶的紫外光谱 | 第87页 |
4.3.9 CMC酶的红外光谱分析 | 第87-90页 |
4.3.10 CMC酶的酶促反应动力学研究 | 第90-105页 |
4.3.10.1 木霉 | 第91-93页 |
4.3.10.2 康宁木霉 | 第93-95页 |
4.3.10.3 黑曲霉 | 第95-97页 |
4.3.10.4 宇佐美曲霉 | 第97-99页 |
4.3.10.5 绿色木霉 | 第99-101页 |
4.3.10.6 米氏常数分析 | 第101-102页 |
4.3.10.7 葡萄糖对纤维素酶的抑制 | 第102-105页 |
本章小结 | 第105-107页 |
5 秸秆发酵制取单细胞蛋白研究 | 第107-133页 |
5.1 霉菌混合培养对蛋白含量及酶活力的影响 | 第107-109页 |
5.1.1 材料与方法 | 第107-108页 |
5.1.2 结果与讨论 | 第108-109页 |
5.1.2.1 五种真菌培养对蛋白含量的影响 | 第108页 |
5.1.2.2 不同霉菌混合培养对蛋白含量及酶活力的影响 | 第108-109页 |
5.2 黑曲霉与酵母共发酵正交实验设计 | 第109-113页 |
5.2.1 材料与方法 | 第110-111页 |
5.2.2 结果与讨论 | 第111-113页 |
5.2.2.1 共发酵正交试验结果 | 第111-112页 |
5.2.2.2 黑曲霉与产朊假丝酵母混合发酵验证 | 第112-113页 |
5.2.2.3 稻草纤维素、半纤维素利用分析 | 第113页 |
5.3 多种真菌与酵母共发酵正交试验设计 | 第113-116页 |
5.3.1 材料与方法 | 第113-114页 |
5.3.2 结果与讨论 | 第114-116页 |
5.3.2.1 共发酵正交试验结果 | 第114-116页 |
5.3.2.2 混合培养对秸秆成分的影响 | 第116页 |
5.4 康宁木霉、宇佐美曲霉与酵母共发酵研究 | 第116-119页 |
5.4.1 材料与方法 | 第116-117页 |
5.4.2 结果与讨论 | 第117-119页 |
5.4.2.1 霉菌与酵母菌混合培养对蛋白含量和酶活性的影响 | 第117-118页 |
5.4.2.2 培养时间对发酵结果的影响 | 第118页 |
5.4.2.3 混合培养产物氨基酸分析 | 第118-119页 |
5.5 木霉、绿色木霉与酵母共发酵研究 | 第119-121页 |
5.5.1 材料与方法 | 第119-120页 |
5.5.2 结果与讨论 | 第120-121页 |
5.5.2.1 霉菌与酵母菌混合培养对蛋白含量和酶活性的影响 | 第120-121页 |
5.5.2.2 混合发酵物纤维素、半纤维素分析 | 第121页 |
5.6 固态发酵物中蛋白质的测定 | 第121-126页 |
5.6.1 材料和方法 | 第122页 |
5.6.2 结果与讨论 | 第122-126页 |
5.6.2.1 标准蛋白溶液的配制: | 第122-123页 |
5.6.2.2 紫外分光光度法测定发酵物蛋白含量 | 第123-124页 |
5.6.2.3 甲醛法测定发酵物蛋白含量 | 第124-126页 |
5.7 多菌种混合发酵制备单细胞蛋白研究 | 第126-130页 |
5.7.1 材料和方法 | 第126页 |
5.7.2 结果与讨论 | 第126-130页 |
5.7.2.1 混合培养对蛋白含量的影响 | 第126-127页 |
5.7.2.2 混合培养产物氨基酸分析 | 第127-128页 |
5.7.2.3 秸秆发酵制备蛋白饲料工艺流程设计 | 第128-130页 |
5.8 固态发酵蔗渣转化蛋白饲料研究 | 第130-133页 |
5.8.1 材料和方法 | 第130页 |
5.8.2 结果与讨论 | 第130-132页 |
5.8.2.1 霉菌在蔗渣上生长情况分析 | 第130-131页 |
5.8.2.2 霉菌与酵母混合培养对蔗渣成分的影响 | 第131-132页 |
本章小结 | 第132-133页 |
结论 | 第133-135页 |
参考文献 | 第135-142页 |
致谢 | 第142-143页 |
博士研究生期间所发表的论文目录 | 第143页 |