缩略词表 | 第1-8页 |
中文摘要 | 第8-11页 |
英文摘要 | 第11-15页 |
前言 | 第15-17页 |
材料和方法 | 第17-35页 |
一、技术路线 | 第17-18页 |
二、实验材料 | 第18-25页 |
1.提取CaM及CaMKⅡ | 第18页 |
2.细胞、细胞培养及试剂 | 第18-19页 |
3.受体激动剂、拮抗剂、工具药 | 第19页 |
4.CAMP,CaM活性,CaMKⅡ活性测定 | 第19-20页 |
5.Western blot | 第20-21页 |
6.NOS测定 | 第21页 |
7.质粒和菌株 | 第21-22页 |
8.分子生物学试剂 | 第22-23页 |
9.RT-PCR | 第23页 |
10.主要仪器 | 第23-25页 |
三、实验方法 | 第25-35页 |
1.氟奋乃静-sepharose的制备 | 第25页 |
2.CaM的制备 | 第25页 |
3.制备CaM-Sepharose 4B交联物 | 第25-26页 |
4.DEAE-cellulose的制备 | 第26页 |
5.CaMKⅡ的提取 | 第26页 |
6.提取CaMKⅡ激酶活性测定 | 第26-27页 |
7.药理实验分组 | 第27页 |
8.细胞培养 | 第27页 |
9.CaM活性测定 | 第27-28页 |
10.CaMKⅡ活性测定 | 第28页 |
11.CaMKⅡ含量测定 | 第28-29页 |
12.环磷酸腺苷激酶提取和纯化 | 第29-30页 |
13.cAMP水平测定 | 第30页 |
14.NOS活性测定 | 第30-31页 |
15.大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第31页 |
16.质粒DNA小量制备 | 第31-32页 |
17.细胞总RNA的提取 | 第32页 |
18.甲醛变性电泳法 | 第32页 |
19.RT-PCR反应 | 第32-33页 |
20.蛋白质浓度测定 | 第33-34页 |
21.统计方法 | 第34-35页 |
第一部分:钙调蛋白依赖性蛋白激酶Ⅱ的制备与活性测定 | 第35-42页 |
实验结果 | 第35-39页 |
一、CaM的提取与纯化 | 第35-36页 |
二、CaMKⅡ的提取与纯化 | 第36-37页 |
三、CaMKⅡ的SDS-PAGE结果 | 第37-38页 |
四、CaMKⅡ提取物的活性测定 | 第38-39页 |
讨论 | 第39-41页 |
结论 | 第41-42页 |
第二部分:阿片类药物对NG108-15细胞Ca~(2+)/钙调蛋白依赖的蛋白激酶信息通路的作用 | 第42-56页 |
实验结果 | 第42-51页 |
1.DPDPE长时程作用于NG108-15细胞,对cAMP水平的作用 | 第42-43页 |
2.DPDPE长时程作用于NG108-15细胞,对CaM活性的作用 | 第43-44页 |
3.DPDPE长时程作用于NG108-15细胞,加入10~(-5)mol·L~(-1)纳洛酮,对CaM活性的作用 | 第44-46页 |
4.DPDPE长时程作用于NG108-15细胞,对CaMK Ⅱ活性的作用 | 第46-47页 |
5.DPDPE长时程作用于NG108-15细胞,加入10~(-5)mol·L~(-1)纳洛酮,对CaMKⅡ活性的作用 | 第47-49页 |
6.DPDPE长时程作用于NG108-15细胞,对CaMKⅡ含量的作用 | 第49-51页 |
讨论 | 第51-55页 |
结论 | 第55-56页 |
第三部分 Ca~(2+)/CaMK信息通路与其他信息通路之间的关系 | 第56-64页 |
实验结果 | 第56-60页 |
1.DPDPE、DPDPE+W-7、DPDPE+KN-62作用于不同细胞株cAMP活性的变化 | 第56-57页 |
2.DPDPE长时程作用于不同细胞系CaM活性的改变 | 第57-58页 |
3.DPDPE长时程作用于不同细胞系CaMKⅡ活性的改变 | 第58-59页 |
4.DPDPE、DPDPE+W-7、DPDPE+KN-62作用于不同细胞株NOS活性的变化 | 第59-60页 |
讨论 | 第60-62页 |
结论 | 第62-64页 |
第四部分:阿片耐受依赖过程中Ca~(2+)/Calmodulin dependent protein kinase通路对阿片受体水平的调节 | 第64-70页 |
实验结果 | 第64-68页 |
1.细胞总RNA的提取与鉴定 | 第64页 |
2.RT-PCR检测NG108-15细胞内mDOR mRNA的表达 | 第64-68页 |
讨论 | 第68页 |
结论 | 第68-70页 |
参考文献 | 第70-79页 |
综述一 | 第79-116页 |
综述二 | 第116-124页 |
致谢 | 第124页 |