| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-25页 |
| ·海洋污染监测 | 第11-17页 |
| ·理化监测 | 第12页 |
| ·生物监测 | 第12-17页 |
| ·指示动物监测技术 | 第13-14页 |
| ·指示植物监测技术 | 第14-15页 |
| ·指示微生物监测技术 | 第15-16页 |
| ·现代生物监测技术 | 第16-17页 |
| ·半知菌作为指示微生物的研究 | 第17-21页 |
| ·指示半知菌的研究背景 | 第17-18页 |
| ·指示半知菌的筛选 | 第18页 |
| ·指示半知菌的检测 | 第18-21页 |
| ·形态学检测 | 第18页 |
| ·分子生物学检测 | 第18-21页 |
| ·PCR技术在指示半知菌检测中的影响因素 | 第21-23页 |
| ·PCR技术的类型 | 第21-22页 |
| ·PCR条件的优化 | 第22-23页 |
| ·本章小节 | 第23-24页 |
| ·本研究的主要内容 | 第24-25页 |
| 第二章 近海沉积物中半知菌优势指示菌的分离筛选和鉴定 | 第25-43页 |
| 第一节 近海沉积物样品重金属和氮磷含量测定 | 第25-29页 |
| ·材料 | 第25页 |
| ·样品采集及处理 | 第25页 |
| ·试剂与仪器 | 第25页 |
| ·方法 | 第25-27页 |
| ·重金属含量测定 | 第25-26页 |
| ·总氮含量测定 | 第26-27页 |
| ·总磷含量测定 | 第27页 |
| ·结果 | 第27-28页 |
| ·讨论 | 第28-29页 |
| 第二节 沉积物样品中半知菌优势种的分离和鉴定 | 第29-39页 |
| ·材料 | 第29-30页 |
| ·样品采集及处理 | 第29页 |
| ·分离培养基 | 第29-30页 |
| ·方法 | 第30-33页 |
| ·沉积物半知菌优势种的分离计数 | 第30页 |
| ·优势种形态学特征鉴定 | 第30页 |
| ·优势种分子生物学鉴定 | 第30-33页 |
| ·结果 | 第33-39页 |
| ·沉积物可培养半知菌种群数量统计 | 第33-34页 |
| ·菌株形态和系统发育学鉴定结果 | 第34-39页 |
| ·讨论 | 第39页 |
| 第三节 半知菌优势指示菌的筛选 | 第39-42页 |
| ·材料 | 第39-40页 |
| ·供试菌株 | 第39页 |
| ·供试重金属元素离子浓度 | 第39-40页 |
| ·培养基 | 第40页 |
| ·方法 | 第40页 |
| ·孢子悬浮液制备 | 第40页 |
| ·优势指示菌筛选 | 第40页 |
| ·结果 | 第40-42页 |
| ·Cu元素的影响 | 第40-41页 |
| ·Zn元素的影响 | 第41页 |
| ·其余元素的影响 | 第41-42页 |
| ·讨论 | 第42页 |
| 第四节 本章小结 | 第42-43页 |
| 第三章 半知菌 JYX-201 菌株（Penicillium griseofulvum）对海洋污染重金属反应研究 | 第43-54页 |
| 1 材料 | 第43页 |
| ·供试重金属元素离子浓度 | 第43页 |
| ·培养基 | 第43页 |
| ·供试菌株 | 第43页 |
| 2 方法 | 第43-45页 |
| ·菌株孢子萌发测定 | 第43-44页 |
| ·菌落生长变化测定 | 第44页 |
| ·菌株防御酶活测试 | 第44页 |
| ·GOD活性测定 | 第44页 |
| ·CAT活性测定 | 第44页 |
| ·菌株金属硫蛋白活性测定 | 第44-45页 |
| 3 结果与分析 | 第45-51页 |
| ·不同浓度的重金属离子对孢子萌发的影响 | 第45-48页 |
| ·Cu~(2+)对孢子萌发的影响 | 第45-46页 |
| ·Zn~(2+)对孢子萌发的影响 | 第46-48页 |
| ·重金属对菌落生长的影响 | 第48-49页 |
| ·Cu~(2+)的影响 | 第48页 |
| ·Zn~(2+)的影响 | 第48-49页 |
| ·菌株酶活测定结果 | 第49-50页 |
| ·Cu~(2+)对酶活的影响 | 第49-50页 |
| ·Zn~(2+)对酶活的影响 | 第50页 |
| ·金属硫蛋白活性测定 | 第50-51页 |
| ·Cu~(2+)对金属硫蛋白活性的影响 | 第50-51页 |
| ·Zn~(2+)对金属硫蛋白活性的影响 | 第51页 |
| 4 讨论 | 第51-52页 |
| 5 本章小结 | 第52-54页 |
| 第四章 近岸污染指示半知菌 JYX-201 灰黄青霉(Penicillium griseofulvum）的分子检测 | 第54-65页 |
| 1 材料 | 第54页 |
| ·供试菌株 | 第54页 |
| ·培养基 | 第54页 |
| 2 方法 | 第54-57页 |
| ·菌株DNA提取 | 第54-55页 |
| ·菌丝体DNA提取 | 第54-55页 |
| ·分生孢子的收集及其DNA的提取 | 第55页 |
| ·沉积物中菌株DNA的提取 | 第55页 |
| ·引物设计与PCR扩增 | 第55-56页 |
| ·引物AS1/RS4设计 | 第55页 |
| ·引物IAO1/IAO2设计 | 第55页 |
| ·常规PCR反应 | 第55-56页 |
| ·套式PCR反应 | 第56页 |
| ·PCR扩增检测 | 第56-57页 |
| ·基因组DNA的灵敏度检测 | 第56页 |
| ·菌株分生孢子DNA的灵敏度检测 | 第56页 |
| ·近海沉积物样品中的菌株分生孢子DNA的灵敏度检测 | 第56-57页 |
| ·近海沉积物样品中菌株的检测 | 第57页 |
| 3 结果与分析 | 第57-63页 |
| ·引物设计 | 第57-58页 |
| ·引物AS1/RS4设计结果 | 第57页 |
| ·引物IAO1/IAO2设计结果 | 第57-58页 |
| ·引物特异性PCR扩增 | 第58-59页 |
| ·引物扩增的稳定性 | 第58页 |
| ·引物扩增的特异性 | 第58-59页 |
| ·PCR扩增基因组DNA的灵敏度检测结果 | 第59-61页 |
| ·分生孢子DNA的灵敏度检测结果 | 第61-62页 |
| ·菌株分生孢子DNA的检测结果 | 第61页 |
| ·近海沉积物中的菌株分生孢子DNA的检测结果 | 第61-62页 |
| ·近海沉积物样品中菌株的检测 | 第62-63页 |
| 4 讨论 | 第63-64页 |
| 5 本章小结 | 第64-65页 |
| 结论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 附录 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第74-75页 |
