| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 文献综述 | 第10-16页 |
| 1 引言 | 第16-17页 |
| ·研究目的及意义 | 第16页 |
| ·国内外研究现状 | 第16页 |
| ·本研究要解决的问题 | 第16-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-25页 |
| ·实验材料 | 第17-18页 |
| ·培养基 | 第17页 |
| ·药品与试剂 | 第17-18页 |
| ·质粒 | 第18页 |
| ·主要仪器与设备 | 第18页 |
| ·实验方法 | 第18-25页 |
| ·菌株的筛选 | 第18-20页 |
| ·降解菌的分离纯化 | 第20页 |
| ·降解率的测定 | 第20-21页 |
| ·初筛菌株降解能力的验证 | 第21页 |
| ·菌株1651RNA 基因序列测定和分析 | 第21页 |
| ·毒死蜱降解菌株β菌抗药性的测定 | 第21-22页 |
| ·E.coli WA803 质粒pTR102 的提取 | 第22页 |
| ·毒死蜱降解菌β菌株的电转化 | 第22-23页 |
| ·转化子的遗传稳定性和生理特性 | 第23页 |
| ·转化子对毒死蜱的降解能力 | 第23页 |
| ·转化子Lux-β在土壤中的定殖动态和对土壤中毒死蜱的降解能力 | 第23-25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-36页 |
| ·毒死蜱降解菌株的筛选和鉴定 | 第25-28页 |
| ·毒死蜱降解菌株的获得 | 第25页 |
| ·β菌株降解能力的验证 | 第25-26页 |
| ·β菌株165 rRNA 基因序列的PCR 扩增与测序结果 | 第26-28页 |
| ·电转化受体菌的抗性筛选和外源质粒DNA 的提取 | 第28-29页 |
| ·毒死蜱降解菌β菌株的抗药性 | 第28页 |
| ·质粒pTR102 的浓度和纯度 | 第28-29页 |
| ·转化子Lux-β的获得 | 第29-32页 |
| ·不同质粒浓度条件下的转化结果 | 第29-30页 |
| ·受体菌生长状况对转化效率的影响 | 第30页 |
| ·转化子Lux-β中pTR102 的遗传稳定性和标记菌株的生理特性 | 第30-32页 |
| ·转化子Lux-β与β菌株对毒死蜱的降解能力 | 第32-33页 |
| ·转化子Lux-β在土壤中的生存变化 | 第33-34页 |
| ·转化子Lux-β对土壤中毒死蜱的降解动力学 | 第34-36页 |
| ·不同处理下毒死蜱含量在土壤中的变化 | 第34页 |
| ·不同处理下毒死蜱的降解动力学 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-41页 |
| ·毒死蜱高效降解菌的筛选 | 第36页 |
| ·β菌株抗药性的测定方法 | 第36页 |
| ·电转化法将含发光酶基因luxAB 的质粒pTR102 导入毒死蜱降解菌β 菌株 | 第36-38页 |
| ·转化子Lux-β的生理特性和对毒死蜱的降解能力 | 第38页 |
| ·转化子Lux-β在土壤中的生存变化 | 第38-39页 |
| ·不同处理下毒死蜱含量在土壤中的变化 | 第39-41页 |
| 5 结论 | 第41-43页 |
| ·毒死蜱降解菌株的筛选和鉴定 | 第41页 |
| ·发光酶基因导入毒死蜱降解菌β菌株获得转化子Lux-β | 第41页 |
| ·转化子Lux-β与β菌株对毒死蜱的降解能力 | 第41-42页 |
| ·转化子Lux-β在土壤中的生存变化 | 第42页 |
| ·转化子Lux-β对土壤中毒死蜱降解动力学的影响 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50页 |
