| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 研究背景 | 第10-18页 |
| 1.1 肿瘤研究进展 | 第10-13页 |
| 1.1.1 黑色素瘤研究进展 | 第10-11页 |
| 1.1.2 免疫疗法 | 第11-13页 |
| 1.2 TLR7的研究现状 | 第13-15页 |
| 1.2.1 Toll样受体 | 第13页 |
| 1.2.2 TLR7激动剂 | 第13-15页 |
| 1.2.3 TLR7激动剂抗肿瘤机理 | 第15页 |
| 1.3 5-氮杂胞嘧核苷(Aza)的作用 | 第15-16页 |
| 1.4 Repertaxin | 第16-18页 |
| 第2章 材料与方法 | 第18-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-20页 |
| 2.1.1 主要药物 | 第18页 |
| 2.1.2 实验试剂和抗体 | 第18-19页 |
| 2.1.3 细胞株及实验动物 | 第19页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第19-20页 |
| 2.2 体外实验方法 | 第20-29页 |
| 2.2.1 SZU-106的化学合成方法 | 第20-21页 |
| 2.2.2 细胞株培养 | 第21-22页 |
| 2.2.3 SZU-106对TLR7的激活作用 | 第22-23页 |
| 2.2.4 5-氮杂胞嘧核苷(Aza)的最佳作用浓度确定 | 第23-24页 |
| 2.2.5 全细胞疫苗Aza-cell-106的制备 | 第24页 |
| 2.2.6 ELISA检测全细胞疫苗对脾淋巴细胞和髓源树突状细胞BMDC的刺激作用 | 第24-25页 |
| 2.2.7 流式检测 | 第25-26页 |
| 2.2.8 树突状细胞DC吞噬实验 | 第26-27页 |
| 2.2.9 Westernblot | 第27-29页 |
| 2.3 动物实验方法 | 第29-33页 |
| 2.3.1 小鼠黑色素肿瘤模型的建立 | 第29页 |
| 2.3.2 全细胞疫苗治疗效果 | 第29-30页 |
| 2.3.3 组织脱水和包埋 | 第30页 |
| 2.3.4 石蜡切片 | 第30-31页 |
| 2.3.5 HE染色 | 第31页 |
| 2.3.6 免疫组化 | 第31-32页 |
| 2.3.7 CBA测小鼠血清中免疫因子 | 第32-33页 |
| 2.4 统计学方法 | 第33-34页 |
| 第3章 实验结果 | 第34-49页 |
| 3.1 体外试验 | 第34-43页 |
| 3.1.1 全新TLR7激动剂SZU-106的化学合成 | 第34-35页 |
| 3.1.2 SZU-106能激活TLR7信号通路 | 第35-37页 |
| 3.1.3 5-氮杂胞嘧核苷(Aza)最佳浓度确定 | 第37-38页 |
| 3.1.4 Aza能促进B16-F10细胞内TLR3蛋白表达量的影响 | 第38-39页 |
| 3.1.5 Aza-cell-106疫苗的制备及其体外免疫激活效果评价 | 第39-40页 |
| 3.1.6 Aza-cell-106疫苗对DC的影响 | 第40-43页 |
| 3.2 体内实验 | 第43-49页 |
| 3.2.1 Aza-cell-106疫苗抑制肿瘤和增强趋化因子抑制剂Repertaxin抗肿瘤作用的效果 | 第44-46页 |
| 3.2.2 Aza-cell-106疫苗激活小鼠免疫应答 | 第46-49页 |
| 第4章 讨论 | 第49-53页 |
| 4.1 SZU-106的TLR7激动效果 | 第49-50页 |
| 4.2 全细胞肿瘤疫苗Aza-cell-106的制备 | 第50页 |
| 4.3 Aza-cell-106疫苗的效果与展望 | 第50-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 附录 | 第61-62页 |
| 附件 | 第62-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第73页 |
