3-氨基丁醇检测和生物拆分方法的初步研究
| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 缩略词简表 | 第10-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 手性药物的制备 | 第13-14页 |
| 1.3 手性药物抗艾滋新药-度鲁特韦 | 第14-17页 |
| 1.3.1 度鲁特的简单介绍 | 第14-15页 |
| 1.3.2 度鲁特韦的抗艾滋效果 | 第15-16页 |
| 1.3.3 度鲁特韦的市场前景 | 第16-17页 |
| 1.3.4 度鲁特韦的重要中间体 | 第17页 |
| 1.4 R-3-氨基丁醇 | 第17-21页 |
| 1.4.1 氨基丁醇的简述 | 第17-18页 |
| 1.4.2 制备R-3-氨基丁醇的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.5 生物拆分法合成R-3-氨基丁醇 | 第21-22页 |
| 1.5.1 生物催化法 | 第21页 |
| 1.5.2 生物拆分合成R-3-氨基丁醇 | 第21-22页 |
| 1.6 本课题选题及工作意义 | 第22-23页 |
| 1.7 本章小结 | 第23-24页 |
| 第二章 氨基丁醇的荷移高效液相检测 | 第24-54页 |
| 2.1 引言 | 第24-26页 |
| 2.1.1 荷移络合物的简述 | 第24-25页 |
| 2.1.2 荷移络合物的应用 | 第25-26页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 仪器与设备 | 第26页 |
| 2.2.2 试剂与材料 | 第26-27页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.3 实验结果 | 第29-42页 |
| 2.3.1 荷移反应条件的优化 | 第29-37页 |
| 2.3.2 荷移络合物组成的测定 | 第37-40页 |
| 2.3.3 荷移络合物稳定常数的测定及反应机理 | 第40-42页 |
| 2.4 氨基丁醇的含量测定-高效液相色谱法 | 第42-49页 |
| 2.4.1 实验方法 | 第42页 |
| 2.4.2 液相色谱条件的选择 | 第42-48页 |
| 2.4.3 液相谱图 | 第48-49页 |
| 2.5 混合氨基醇的含量测定-高效液相色谱法 | 第49-53页 |
| 2.5.1 实验方法 | 第49页 |
| 2.5.2 分析方法 | 第49-50页 |
| 2.5.3 实验结果与讨论 | 第50-53页 |
| 2.6 本章小结 | 第53-54页 |
| 第三章 生物拆分氨基丁醇 | 第54-70页 |
| 3.1 引言 | 第54-55页 |
| 3.2 生物拆分混旋氨基丁醇 | 第55-63页 |
| 3.2.1 仪器与设备 | 第55-56页 |
| 3.2.2 试剂与材料 | 第56页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第56-59页 |
| 3.2.4 高效液相色谱法测定氨基丁醇 | 第59页 |
| 3.2.5 气相色谱法检测氨基丁醇 | 第59-62页 |
| 3.2.6 菌种鉴定 | 第62-63页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第63-69页 |
| 3.3.1 筛选结果 | 第63-64页 |
| 3.3.2 菌落形态 | 第64页 |
| 3.3.3 OD变化 | 第64-65页 |
| 3.3.4 氨基丁醇含量变化 | 第65-67页 |
| 3.3.5 氨基丁醇手性剩余 | 第67-68页 |
| 3.3.6 菌种鉴定 | 第68页 |
| 3.3.7 实验结果讨论 | 第68-69页 |
| 3.4 本章小结 | 第69-70页 |
| 结论和展望 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-77页 |
| 硕士期间发表的论文和专利 | 第77-78页 |
| 附录 | 第78-81页 |
