摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩略词列表 | 第9-10页 |
前言 | 第10-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-24页 |
1.1 甲氧基丙烯酸酯类衍生物研究进展 | 第12-18页 |
1.2 二硫缩醛类衍生物研究进展 | 第18-20页 |
1.3 抗病毒作用机制的研究 | 第20-22页 |
1.3.1 植物生理生化抗病机制的研究 | 第20-21页 |
1.3.2 植物免疫诱抗剂抗病分子信号传导机制研究 | 第21-22页 |
1.4 本章小结 | 第22-24页 |
第二章 设计思想及其合成路线 | 第24-27页 |
2.1 论文选题的目的和意义 | 第24页 |
2.2 设计思想 | 第24-25页 |
2.3 研究内容 | 第25-26页 |
2.4 化合物合成路线 | 第26-27页 |
第三章 目标化合物的合成 | 第27-45页 |
3.1 仪器及试剂 | 第27页 |
3.2 中间体和目标化合物的合成 | 第27-44页 |
3.2.1 关键中间体A1和A2的合成 | 第27-28页 |
3.2.2 关键中间体B1-B12的合成 | 第28-32页 |
3.2.3 目标化合物C1-C28的合成 | 第32-44页 |
3.3 本章小结 | 第44-45页 |
第四章 抗病毒活性筛选 | 第45-56页 |
4.1 抗马铃薯Y病毒(PVY)生物活性测定 | 第45-47页 |
4.1.1 实验方法与材料 | 第45页 |
4.1.2 马铃薯Y病毒提纯 | 第45页 |
4.1.3 化合物浓度的配制 | 第45-46页 |
4.1.4 药剂对PVY活体治疗作用 | 第46页 |
4.1.5 药剂对PVY活体保护作用 | 第46页 |
4.1.6 结果调查与分析 | 第46-47页 |
4.1.7 抗PVY治疗、保护活性的EC_(50)值测定 | 第47页 |
4.2 抗黄瓜花叶病毒(CMV)生物活性测定 | 第47-49页 |
4.2.1 实验方法与材料 | 第47页 |
4.2.2 黄瓜花叶病毒提取 | 第47-48页 |
4.2.3 化合物浓度的配制 | 第48页 |
4.2.4 药剂对CMV活体治疗作用 | 第48页 |
4.2.5 药剂对CMV活体保护作用 | 第48页 |
4.2.6 抗CMV治疗、保护活性的EC_(50)值测定 | 第48-49页 |
4.3 抗烟草花叶病毒(TMV)生物活性测定 | 第49-51页 |
4.3.1 实验方法与材料 | 第49页 |
4.3.2 化合物浓度的配制 | 第49页 |
4.3.3 药剂对TMV活体治疗作用 | 第49-50页 |
4.3.4 药剂对TMV活体保护作用 | 第50页 |
4.3.5 抗TMV治疗、保护活性的EC_(50)值测定 | 第50-51页 |
4.4 结果与分析 | 第51-54页 |
4.4.1 含二硫缩醛的甲氧基丙烯酸酯类衍生物的抗病毒活性初筛 | 第51-52页 |
4.4.2 含二硫缩醛的甲氧基丙烯酸酯类衍生物的抗病毒活性EC_(50)测试 | 第52-54页 |
4.5 本章小结 | 第54-56页 |
第五章 抗黄瓜花叶病毒作用机制研究 | 第56-72页 |
5.1 仪器与试剂 | 第56-57页 |
5.2 实验材料的准备 | 第57页 |
5.3 叶绿素含量测定 | 第57-59页 |
5.3.1 叶绿素含量测定方法 | 第57-58页 |
5.3.2 叶绿素含量测定结果与分析 | 第58-59页 |
5.4 防御酶活性测定 | 第59-63页 |
5.4.1 SOD活性测定 | 第59-60页 |
5.4.2 POD活性测定 | 第60-61页 |
5.4.3 CAT活性测定 | 第61-62页 |
5.4.4 PAL活性测定 | 第62-63页 |
5.5 化合物C14处理后烟草相关基因RT-PCR检测 | 第63-66页 |
5.5.1 实验方法 | 第63-65页 |
5.5.2 结果与分析 | 第65-66页 |
5.6 差异蛋白分析 | 第66-71页 |
5.6.1 蛋白质的提取、定量及分离 | 第66-67页 |
5.6.2 蛋白质的鉴定 | 第67-68页 |
5.6.3 差异蛋白数据分析 | 第68页 |
5.6.4 生物信息学分析 | 第68-71页 |
5.7 本章小结 | 第71-72页 |
第六章 结论与展望 | 第72-74页 |
6.1 主要结果 | 第72-73页 |
6.2 创新点 | 第73页 |
6.3 不足与展望 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-83页 |
附录 | 第83-93页 |