| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 1 材料 | 第13-16页 |
| 1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.2 实验试剂 | 第13-14页 |
| 1.3 手术器械 | 第14页 |
| 1.4 主要实验仪器 | 第14-16页 |
| 2 方法 | 第16-22页 |
| 2.1 小鼠嗅鞘细胞提取、分离、纯化及培养 | 第16页 |
| 2.2 嗅鞘细胞热预处理 | 第16页 |
| 2.3 小鼠神经干细胞系C17.2细胞复苏、传代及培养 | 第16-17页 |
| 2.3.1 C17.2神经干细胞复苏 | 第16-17页 |
| 2.3.2 C17.2神经干细胞的传代 | 第17页 |
| 2.4 细胞流式术 | 第17-18页 |
| 2.5 RT-PCR | 第18-20页 |
| 2.6 Western-blot | 第20页 |
| 2.7 ELISA | 第20页 |
| 2.8 细胞活力检测 | 第20-21页 |
| 2.9 嗅鞘细胞无血清上清液诱导小鼠神经干细胞系C17.2细胞分化 | 第21页 |
| 2.10 细胞免疫荧光 | 第21页 |
| 2.11 统计学分析 | 第21-22页 |
| 3 结果 | 第22-31页 |
| 3.1 OECs培养与鉴定 | 第22页 |
| 3.2 C17.2 NSCs培养与鉴定 | 第22页 |
| 3.3 OECs纯度检测 | 第22-24页 |
| 3.4 热预处理对OECs细胞活力的影响 | 第24页 |
| 3.5 热预处理对OECs HIF-1α转录及蛋白表达水平的影响 | 第24-25页 |
| 3.6 HIF-1α表达上调对其下游靶基因EPO,VEGF的影响 | 第25-27页 |
| 3.7 诱导C17.2NSCs向神经元分化 | 第27-28页 |
| 3.8 诱导后神经元的鉴定及分化比例检测 | 第28-31页 |
| 4 讨论 | 第31-37页 |
| 4.1 嗅鞘细胞在神经再生领域中的研究与应用 | 第31页 |
| 4.2 HIF-1α对神经再生的影响 | 第31-32页 |
| 4.3 HIF-1靶基因对微环境及神经再生的影响 | 第32-35页 |
| 4.3.1 VEGF对神经再生微循环影响 | 第33页 |
| 4.3.2 VEGF对神经再生的影响 | 第33页 |
| 4.3.3 EPO | 第33-34页 |
| 4.3.4 SDF-1和SCF | 第34页 |
| 4.3.5 其他靶基因 | 第34-35页 |
| 4.4 OECs热预处理后HIF-1α表达及引起的生物学效应 | 第35-37页 |
| 5 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-44页 |
| 综述 | 第44-52页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 主要缩写词表 | 第52-53页 |
| 在读期间发表的主要学术论文及参与课题 | 第53-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
