| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-32页 |
| 1.1 小麦条锈病 | 第15页 |
| 1.2 植物非寄主抗病性 | 第15-19页 |
| 1.2.1 植物非寄主抗病性的特点 | 第15-16页 |
| 1.2.2 非寄主抗病性的类型 | 第16-17页 |
| 1.2.3 非寄主抗病性的分子机制 | 第17-18页 |
| 1.2.4 非寄主抗病性与寄主抗病性的关系 | 第18-19页 |
| 1.3 系统获得抗病性 | 第19-21页 |
| 1.3.1 系统获得抗病性的特点 | 第19页 |
| 1.3.2 系统获得抗病性中的信号传导 | 第19-20页 |
| 1.3.3 SAR 同其他防卫反应的交互作用 | 第20-21页 |
| 1.4 蛋白质组学 | 第21-26页 |
| 1.4.1 蛋白质组学研究基础 | 第21页 |
| 1.4.2 蛋白质组学的研究方法 | 第21-23页 |
| 1.4.3 非生物胁迫下的蛋白质组学研究 | 第23-25页 |
| 1.4.4 生物胁迫下的蛋白质组学研究 | 第25页 |
| 1.4.5 锈病相关蛋白质组学研究 | 第25-26页 |
| 1.5 小麦条锈菌抗病遗传研究 | 第26-27页 |
| 1.5.1 小麦条锈菌质量性状遗传研究 | 第26-27页 |
| 1.5.2 小麦条锈菌数量性状遗传研究 | 第27页 |
| 1.5.3 抗病基因资源筛选 | 第27页 |
| 1.6 病毒诱导的基因沉默 | 第27-30页 |
| 1.6.1 VIGS 的分子机制 | 第27-28页 |
| 1.6.2 VIGS 载体的开发 | 第28-29页 |
| 1.6.3 VIGS 在植物抗病基因功能研究中的进展 | 第29-30页 |
| 1.6.4 VIGS 技术的优缺点 | 第30页 |
| 1.7 本研究的目的和意义 | 第30-32页 |
| 第二章 水稻-小麦条锈菌非寄主抗性的组织细胞学研究 | 第32-46页 |
| 2.0 前言 | 第32页 |
| 2.1 材料、试剂及仪器 | 第32-33页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第32-33页 |
| 2.1.2 试剂及仪器 | 第33页 |
| 2.2 试验方法 | 第33-37页 |
| 2.2.1 植物材料种植与接种 | 第33页 |
| 2.2.2 组织病理学观察 | 第33-35页 |
| 2.2.3 活性氧的组织化学检测 | 第35页 |
| 2.2.4 扫描电镜样品的制备 | 第35页 |
| 2.2.5 总 RNA 提取与 cDNA 第一链合成 | 第35-36页 |
| 2.2.6 Quantitative Real-Time PCR 分析 | 第36-37页 |
| 2.3 结果与分析 | 第37-42页 |
| 2.3.1 粳籼稻对小麦条锈菌 NHR 的差异 | 第37页 |
| 2.3.2 条锈菌在粳稻叶片表面的异常分化 | 第37页 |
| 2.3.3 过氧化氢在水稻-条锈菌互作初始阶段的重要作用 | 第37-40页 |
| 2.3.4 条锈菌诱导下的水稻活性氧相关基因的表达特征 | 第40-42页 |
| 2.4 结论与讨论 | 第42-46页 |
| 2.4.1 水稻-锈菌系统是研究非寄主抗性的理想体系 | 第42页 |
| 2.4.2 籼稻对条锈菌的非寄主抗性弱于粳稻 | 第42-43页 |
| 2.4.3 条锈菌在水稻叶片表面的异常分化 | 第43-44页 |
| 2.4.4 H2O2在水稻-条锈菌互作过程中的重要作用 | 第44-46页 |
| 第三章 水稻-小麦条锈菌非寄主抗性的蛋白质组学研究 | 第46-60页 |
| 3.0 前言 | 第46页 |
| 3.1 材料、试剂及仪器 | 第46-48页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第46页 |
| 3.1.2 试剂及仪器 | 第46-48页 |
| 3.2 试验方法 | 第48-51页 |
| 3.2.1 蛋白样品制备和定量 | 第48页 |
| 3.2.2 双向电泳分析 | 第48-49页 |
| 3.2.3 凝胶图像获取与分析 | 第49-50页 |
| 3.2.4 差异蛋白的质谱鉴定 | 第50页 |
| 3.2.5 差异蛋白的数据库检索 | 第50页 |
| 3.2.6 RNA 提取与 Quantitative Real-Time PCR 分析 | 第50-51页 |
| 3.3 结果与分析 | 第51-55页 |
| 3.3.1 蛋白上样量的优化 | 第51页 |
| 3.3.2 条锈菌诱导水稻差异表达蛋白的双向电泳分析 | 第51-53页 |
| 3.3.3 差异表达蛋白的质谱鉴定 | 第53页 |
| 3.3.4 差异表达蛋白编码基因的转录分析 | 第53-55页 |
| 3.4 结论与讨论 | 第55-60页 |
| 第四章 水稻抗小麦条锈 QTL 的遗传分析 | 第60-73页 |
| 4.0 前言 | 第60页 |
| 4.1 材料、试剂及仪器 | 第60-62页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第60-61页 |
| 4.1.2 试剂及仪器 | 第61-62页 |
| 4.2 试验方法 | 第62-65页 |
| 4.2.1 F_2群体的构建和条锈菌侵染鉴定 | 第62页 |
| 4.2.2 DNA 提取 | 第62-63页 |
| 4.2.3 PCR 体系及程序 | 第63页 |
| 4.2.4 凝胶电泳 | 第63-64页 |
| 4.2.5 数据统计及连锁分析 | 第64-65页 |
| 4.3 结果与分析 | 第65-71页 |
| 4.3.1 亲本在条锈菌侵染下的表现 | 第65页 |
| 4.3.2 F_2分离群体在条锈菌侵染下的表现 | 第65-66页 |
| 4.3.3 水稻抗条锈 QTL 初步定位分析 | 第66-69页 |
| 4.3.4 Qsv10/Qca10 位点遗传图谱的加密 | 第69-71页 |
| 4.4 结论与讨论 | 第71-73页 |
| 4.4.1 T-DNA 插入未导致 ccr1 丧失对条锈菌的非寄主抗性 | 第71页 |
| 4.4.2 锈菌非寄主抗性的遗传研究 | 第71页 |
| 4.4.3 Qsv10/Qca10 是一个新的抗病位点 | 第71-72页 |
| 4.4.4 Qsv10/Qca10 在抗病育种中的作用 | 第72-73页 |
| 第五章 甘油-3-磷酸在植物系统获得抗性中的作用 | 第73-93页 |
| 5.0 前言 | 第73页 |
| 5.1 材料、试剂及仪器 | 第73-74页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第73-74页 |
| 5.1.2 试剂及仪器 | 第74页 |
| 5.2 试验方法 | 第74-78页 |
| 5.2.1 植物材料接种与采样 | 第74页 |
| 5.2.2 小麦叶片 G3P 和 SA 含量测定 | 第74-75页 |
| 5.2.3 总 RNA 提取与 cDNA 第一链合成 | 第75页 |
| 5.2.4 小麦 G3P 合成相关基因的克隆 | 第75-76页 |
| 5.2.5 Quantitative Real-Time PCR 分析 | 第76-77页 |
| 5.2.6 BSMV-VIGS 介导的 TaGLY1 和 TaGLI1 基因沉默 | 第77-78页 |
| 5.2.7 组织病理学观察 | 第78页 |
| 5.3 结果与分析 | 第78-89页 |
| 5.3.1 G3P 在条锈菌对小麦诱导接种及挑战接种过程中的变化 | 第78-79页 |
| 5.3.2 小麦中 G3P 合成相关基因的克隆 | 第79-80页 |
| 5.3.3 小麦 G3Pdh 基因和 GK 基因的序列分析 | 第80-81页 |
| 5.3.4 条锈菌诱导 TaG3Pdhs 和 TaGLI1 的表达特征 | 第81-82页 |
| 5.3.5 TaGLY1 和 TaGLI1 的基因沉默表型分析 | 第82-86页 |
| 5.3.6 G3P 在 TaGLY1 和 TaGLI1 基因沉默植株中的变化 | 第86-87页 |
| 5.3.7 基因沉默植株被条锈菌侵染后的组织学观察 | 第87-89页 |
| 5.3.8 SA 在 TaGLY1 和 TaGLI1 基因沉默植株中的变化 | 第89页 |
| 5.4 结论与讨论 | 第89-93页 |
| 5.4.1 小麦种存在 G3P 介导的 SAR | 第89-90页 |
| 5.4.2 TaGLY1 和 TaGLI1 在小麦 G3P 合成及 SAR 中的重要作用 | 第90-91页 |
| 5.4.3 G3P 与 SA 协同作用与 SAR | 第91-92页 |
| 5.4.4 VIGS 在高通量植物基因功能研究中的作用 | 第92-93页 |
| 第六章 全文结论 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-109页 |
| 附录 | 第109-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 个人简介 | 第117页 |
