| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第11-25页 |
| 1.1 电致化学发光(Electrochemiluminescence,ECL) | 第11-13页 |
| 1.1.1 ECL发光原理 | 第11-13页 |
| 1.2 常见的ECL发光中使用的量子点 | 第13-15页 |
| 1.2.1 硫族化物量子点 | 第13-14页 |
| 1.2.2 硅量子点 | 第14页 |
| 1.2.3 碳材料的量子点 | 第14-15页 |
| 1.2.4 掺杂量子点 | 第15页 |
| 1.3 DNA行走装置 | 第15-19页 |
| 1.3.1 单足行走装置 | 第16-17页 |
| 1.3.2 双足行走装置 | 第17页 |
| 1.3.3 多足行走装置 | 第17-18页 |
| 1.3.4 其他新型的行走装置 | 第18-19页 |
| 1.4 基于脱氧核酶(DNAzymes)的生物传感器和纳米装置 | 第19-22页 |
| 1.4.1 脱氧核酶(DNAzymes) | 第19-20页 |
| 1.4.2 基于DNAzymes的生物传感器 | 第20-22页 |
| 1.4.2.1 利用DNAzymes作为识别器件的生物传感器 | 第20-22页 |
| 1.4.2.2 DNAzymes作为催化信号放大器来构建生物传感器 | 第22页 |
| 1.5 等温扩增技术 | 第22-25页 |
| 1.5.1 指数链置换放大(E-SDA) | 第23页 |
| 1.5.1.1 指数滚环放大(ERCA) | 第23页 |
| 1.5.1.2 指数放大反应(EXPAR) | 第23页 |
| 1.5.2 线性放大 | 第23-25页 |
| 1.5.2.1 线性SDA | 第24页 |
| 1.5.2.2 线性RCA | 第24页 |
| 1.5.2.3 信号放大策略 | 第24-25页 |
| 第二章 基于多重酶循环信号放大和WalkerDNA技术电化学发光检测miRNA的研究 | 第25-40页 |
| 2.1 前言 | 第25-26页 |
| 2.2 实验部分 | 第26-29页 |
| 2.2.1 试剂和材料 | 第26-27页 |
| 2.2.2 实验装置 | 第27页 |
| 2.2.3 纳米金的制备 | 第27-28页 |
| 2.2.4 巯基丙酸(MPA)修饰的CdSe量子点的制备 | 第28页 |
| 2.2.5 DNA的预处理 | 第28-29页 |
| 2.2.6 传感器的构建 | 第29页 |
| 2.2.7 生物传感器的ECL检测 | 第29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-39页 |
| 2.3.1 材料表征图 | 第29-31页 |
| 2.3.2 基于多重酶循环信号放大和WalkerDNA技术电化学发光生物传感器检测miRNA的原理 | 第31-32页 |
| 2.3.3 CdSeQDs的电致化学发光性能的表征 | 第32-33页 |
| 2.3.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第33-34页 |
| 2.3.5 传感器构建过程的表征 | 第34-35页 |
| 2.3.6 实验条件的优化 | 第35-36页 |
| 2.3.7 基于酶辅助的循环放大和WalkerDNA的电致化学发光传感分析检测miRNAs研究 | 第36-38页 |
| 2.3.8 基于酶辅助的循环放大和WalkerDNA的电致化学发光传感器的选择性研究 | 第38-39页 |
| 2.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 基于脱氧核酶驱动的WalkerDNA和酶循环放大技术的电化学发光生物传感器检测CEA的研究 | 第40-58页 |
| 3.1 前言 | 第40-41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-45页 |
| 3.2.1 试剂 | 第41-42页 |
| 3.2.2 实验装置 | 第42页 |
| 3.2.3 纳米金的制备 | 第42-43页 |
| 3.2.4 CdSeQDs的制备 | 第43页 |
| 3.2.5 试样及核酸的预处理 | 第43-44页 |
| 3.2.6 传感器的组装 | 第44页 |
| 3.2.7 电致化学发光信号的检测 | 第44-45页 |
| 3.2.8 循环伏安法检测 | 第45页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第45-57页 |
| 3.3.1 材料的表征 | 第45-46页 |
| 3.3.2 基于WalkerDNA和酶循环放大技术电化学发光检测CEA的原理 | 第46-47页 |
| 3.3.3 电泳表征 | 第47-48页 |
| 3.3.4 CdSeQDs的电化学发光性能 | 第48-50页 |
| 3.3.5 基于酶驱动的walkerDNA和酶循环放大的ECL检测CEA的可行性研究 | 第50-51页 |
| 3.3.6 电极的组装表征 | 第51-52页 |
| 3.3.7 实验条件的优化 | 第52-54页 |
| 3.3.8 基于目标触发酶辅助的循环放大技术和铅离子辅助的WalkerDNA技术的ECL传感对CEA的检测 | 第54-55页 |
| 3.3.9 基于该ECL方法对CEA的选择性研究 | 第55-57页 |
| 3.4 本章小结 | 第57-58页 |
| 第四章 基于银纳米簇双重猝灭效应和多重循环放大技术的电化学发光生物传感器超灵敏检测ATP的研究 | 第58-74页 |
| 4.1 前言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验部分 | 第59-62页 |
| 4.2.1 试剂 | 第59-60页 |
| 4.2.2 实验装置 | 第60页 |
| 4.2.3 CdS量子点的制备 | 第60-61页 |
| 4.2.4 寡核苷酸的预处理 | 第61页 |
| 4.2.5 目标引发酶辅助循环放大反应 | 第61页 |
| 4.2.6 银纳米簇的制备 | 第61页 |
| 4.2.7 传感器的制备 | 第61-62页 |
| 4.2.8 ECL信号的检测 | 第62页 |
| 4.2.9 电化学信号检测 | 第62页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第62-73页 |
| 4.3.1 材料的表征 | 第62-64页 |
| 4.3.2 实验原理 | 第64-65页 |
| 4.3.3 电泳图 | 第65-66页 |
| 4.3.4 材料的电化学发光性能 | 第66-68页 |
| 4.3.5 ECL检测的可行性 | 第68-69页 |
| 4.3.6 实验条件的优化 | 第69-71页 |
| 4.3.7 不同浓度目标物的检测 | 第71-72页 |
| 4.3.8 传感器的选择性研究 | 第72-73页 |
| 4.3.9 与其他检测ATP方法的比较 | 第73页 |
| 4.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第97-98页 |
