| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-28页 |
| 1.1 DHA化学结构及理化性质 | 第12-13页 |
| 1.2 DHA生理功能及应用 | 第13-15页 |
| 1.2.1 促进婴幼儿视力和脑部发育 | 第13页 |
| 1.2.2 预防心血管疾病 | 第13-14页 |
| 1.2.3 抗炎作用 | 第14页 |
| 1.2.4 癌症预防 | 第14-15页 |
| 1.3 DHA来源 | 第15-16页 |
| 1.3.1 深海鱼油 | 第15-16页 |
| 1.3.2 海洋微生物 | 第16页 |
| 1.4 海洋微藻 | 第16-17页 |
| 1.5 海洋真菌 | 第17-20页 |
| 1.5.1 破囊壶菌 | 第17-19页 |
| 1.5.2 裂殖壶菌 | 第19-20页 |
| 1.6 裂殖壶菌产DHA发酵条件优化的研究进展 | 第20-23页 |
| 1.6.1 培养基优化 | 第20-21页 |
| 1.6.2 培养条件优化 | 第21-23页 |
| 1.7 控制溶氧分阶段培养裂殖壶菌的研究进展 | 第23-25页 |
| 1.7.1 裂殖壶菌产DHA机理 | 第23-25页 |
| 1.7.2 控制溶氧的分阶段培养 | 第25页 |
| 1.8 选题意义及研究内容 | 第25-28页 |
| 1.8.1 选题意义 | 第25-26页 |
| 1.8.2 研究内容 | 第26-28页 |
| 第2章 Schizochytrium sp.产DHA的发酵条件优化 | 第28-58页 |
| 2.1 前言 | 第28页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第28-31页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第28-30页 |
| 2.2.2 实验设备 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31页 |
| 2.3.1 菌种保藏 | 第31页 |
| 2.3.2 种子培养 | 第31页 |
| 2.3.3 摇瓶培养 | 第31页 |
| 2.4 分析方法 | 第31-34页 |
| 2.4.1 pH测定与调节 | 第31页 |
| 2.4.2 菌体浓度测定 | 第31-32页 |
| 2.4.3 生物量的测定 | 第32-33页 |
| 2.4.4 DHA分析检测 | 第33-34页 |
| 2.5 实验结果与讨论 | 第34-56页 |
| 2.5.1 基本培养基的培养结果 | 第34-35页 |
| 2.5.2 种龄和接种量的影响 | 第35-38页 |
| 2.5.3 碳源的影响 | 第38-43页 |
| 2.5.4 氮源的影响 | 第43-47页 |
| 2.5.5 盐度的影响 | 第47-49页 |
| 2.5.6 初始pH的影响 | 第49-50页 |
| 2.5.7 温度的影响 | 第50-52页 |
| 2.5.8 装液量的影响 | 第52-53页 |
| 2.5.9 培养时间的影响 | 第53-55页 |
| 2.5.10 稳定性评价 | 第55-56页 |
| 2.6 本章小结 | 第56-58页 |
| 第3章 控制溶氧分阶段培养Schizochytrium sp.的研究 | 第58-82页 |
| 3.1 前言 | 第58页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第58-59页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第58-59页 |
| 3.2.2 实验设备 | 第59页 |
| 3.3 实验方法 | 第59-60页 |
| 3.4 分析方法 | 第60-62页 |
| 3.4.1 葡萄糖浓度的测定(DNS法) | 第60-62页 |
| 3.5 实验结果与讨论 | 第62-80页 |
| 3.5.1 单纯摇床培养过程分析 | 第62-65页 |
| 3.5.2 膜强化通气培养过程分析及最佳通气速率的选择 | 第65-74页 |
| 3.5.3 两阶段培养方法的提出 | 第74-77页 |
| 3.5.4 三阶段培养方法的考察 | 第77-80页 |
| 3.6 本章小结 | 第80-82页 |
| 第4章 结论与建议 | 第82-84页 |
| 4.1 结论 | 第82页 |
| 4.2 创新点 | 第82-83页 |
| 4.3 建议 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-92页 |
| 作者简介 | 第92页 |
