| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-10页 |
| 第一章 文章综述 | 第10-23页 |
| 1 磁性高分子微球研究概况 | 第10页 |
| 2 磁性高分子微球的制备 | 第10-17页 |
| ·磁性纳米粒子的制备 | 第10-11页 |
| ·化学共沉淀法 | 第11页 |
| ·高温分解法(热分散法) | 第11页 |
| ·水热(合成)法 | 第11页 |
| ·磁性纳米粒子的表面修饰 | 第11-12页 |
| ·磁性高分子微球的分类 | 第12-13页 |
| ·磁性高分子微球的合成 | 第13-17页 |
| ·包埋法 | 第13-14页 |
| ·原位法 | 第14-15页 |
| ·单体聚合 | 第15-17页 |
| 3 磁性高分子微球的应用 | 第17-20页 |
| ·在生物医学领域的应用 | 第17-18页 |
| ·免疫学检测 | 第17-18页 |
| ·在磁导靶向给药方面的应用 | 第18页 |
| ·在生化分离领域的应用 | 第18-20页 |
| ·在固定化酶方面的应用 | 第18-19页 |
| ·在蛋白质分离与纯化方面的应用 | 第19页 |
| ·在核酸分离中的应用 | 第19页 |
| ·细胞分离 | 第19-20页 |
| 4 生物医用高分子复合微球 | 第20页 |
| 5 环境敏感型高分子水凝胶微球 | 第20-21页 |
| ·环境敏感型高分子微球的类型 | 第20-21页 |
| ·环境敏感性高分子微球的应用 | 第21页 |
| 6 研究背景及研究思路(论文的出发点和主要工作) | 第21-23页 |
| 第二章 聚甲基丙烯酸微球的制备 | 第23-36页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第24页 |
| ·材料与试剂 | 第24页 |
| ·仪器 | 第24页 |
| 2 实验方法 | 第24-25页 |
| ·反相乳液法制备聚甲基丙烯酸微球 | 第24页 |
| ·聚甲基丙烯酸微球的表征 | 第24-25页 |
| ·激光粒度散射仪分析 | 第24页 |
| ·电子扫描显微镜表征 | 第24-25页 |
| ·热失重(TG)分析 | 第25页 |
| 3 结果与讨论 | 第25-34页 |
| ·反应条件的优化 | 第25-32页 |
| ·反应温度对微球形成的影响 | 第25-26页 |
| ·交联剂用量对微球形貌的影响 | 第26-28页 |
| ·促进剂溶剂及用量的改变对微球形貌、粒度分布的影响 | 第28-30页 |
| ·单体水相pH值对微球形貌的影响 | 第30-32页 |
| ·不同粒径的聚甲基丙烯酸微球 | 第32-34页 |
| ·溶剂对微球的影响 | 第34页 |
| 本章小结 | 第34-36页 |
| 第三章 聚甲基丙烯酸磁性复合微球的制备 | 第36-46页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第37页 |
| ·材料与试剂 | 第37页 |
| ·仪器 | 第37页 |
| 2 实验方法 | 第37-39页 |
| ·反相乳液法制备聚甲基丙烯酸磁性复合微球 | 第37-38页 |
| ·柠檬酸修饰的Fe_3O_4制备 | 第37-38页 |
| ·Fe_3O_4/PMAA复合微球的制备 | 第38页 |
| ·聚甲基丙烯酸磁性复合微球的表征 | 第38-39页 |
| ·电子显微镜表征 | 第38页 |
| ·粒度分布检测 | 第38页 |
| ·热失重(TG)分析 | 第38-39页 |
| ·磁学性能表征 | 第39页 |
| 3 结果与讨论 | 第39-44页 |
| ·反应条件的优化 | 第39-40页 |
| ·不同粒径聚甲基丙烯酸磁性高分子复合微球的制备 | 第40-42页 |
| ·不同磁含量聚甲基丙烯酸磁性高分子复合微球的制备 | 第42-44页 |
| ·溶剂对微球的影响 | 第44页 |
| 本章小结 | 第44-46页 |
| 第四章 聚甲基丙烯酸磁性复合微球应用于蛋白质固定化的研究 | 第46-56页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第46-47页 |
| ·材料与试剂 | 第46页 |
| ·仪器 | 第46-47页 |
| ·主要溶液的配制 | 第47页 |
| 2 实验方法 | 第47-51页 |
| ·磁性复合微球固定化人IgG | 第48页 |
| ·pH值对微球固定化人IgG的影响 | 第48页 |
| ·人IgG固定化时间的确定 | 第48页 |
| ·磁性复合微球固定化BSA | 第48-49页 |
| ·pH值对微球固定化BSA的影响 | 第49页 |
| ·磁性复合微球固定化ConA | 第49-50页 |
| ·温度对微球固定化ConA的影响 | 第49页 |
| ·pH值对微球固定化ConA的影响 | 第49-50页 |
| ·磁性复合微球固定化SPA | 第50-51页 |
| ·pH值对微球固定化SPA的影响 | 第50页 |
| ·Fe_3O_4/PMAA-SPA磁复合微球纯化人血清中的IgG的初步探索 | 第50-51页 |
| 3 结果与讨论 | 第51-55页 |
| ·IgG固定化条件的优化 | 第51-53页 |
| ·不同缓冲液体系对微球固定化人IgG的影响 | 第51-52页 |
| ·固定化时间的优化 | 第52-53页 |
| ·BSA固定化条件的优化 | 第53页 |
| ·pH值对微球固定化BSA的影响 | 第53页 |
| ·Con A固定化条件的优化 | 第53-54页 |
| ·温度对微球固定化Con A的影响 | 第53页 |
| ·pH值对微球固定化Con A的影响 | 第53-54页 |
| ·SPA固定化条件的优化 | 第54-55页 |
| ·pH值对微球固定化SPA的影响 | 第54页 |
| ·Fe_3O_4/PMAA-SPA磁性微球纯化人血清中的IgG | 第54-55页 |
| 本章小结 | 第55-56页 |
| 第五章 聚甲基丙烯酸磁性复合微球应用于大肠杆菌(E.Coli)质粒DNA的纯化 | 第56-61页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第56-57页 |
| ·材料与试剂 | 第56页 |
| ·仪器 | 第56-57页 |
| ·主要试剂配制 | 第57页 |
| 2 实验方法 | 第57-59页 |
| ·用磁性复合微球提取E.Coli中的质粒DNA | 第57-59页 |
| ·细菌的培养和收集 | 第57-58页 |
| ·质粒的提取 | 第58-59页 |
| 3 结果与讨论 | 第59-60页 |
| ·质粒DNA的回收量及纯度 | 第59页 |
| ·质粒DNA完整性 | 第59-60页 |
| 本章小结 | 第60-61页 |
| 第六章 聚甲基丙烯酸磁性复合微球作为药物载体的研究 | 第61-71页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第62-63页 |
| ·材料与试剂 | 第62页 |
| ·仪器 | 第62页 |
| ·主要溶液的配制 | 第62-63页 |
| 2 实验方法 | 第63-64页 |
| ·阿霉素检测方法的建立 | 第63页 |
| ·载药聚甲基丙烯酸磁性复合微球的制备 | 第63页 |
| ·磁性复合微球载药量(Drug loading efficiency,DLE)和药物包封率(Drug entrapment efficiency,DEE)的测定 | 第63页 |
| ·左氧氟沙星检测方法的建立 | 第63页 |
| ·载药聚甲基丙烯酸磁性复合微球的制备 | 第63-64页 |
| ·载药磁性复合微球的体外释放 | 第64页 |
| ·载DOX磁性复合微球的体外释放 | 第64页 |
| ·载LVFX磁性复合微球的体外释放 | 第64页 |
| 3 结果与讨论 | 第64-69页 |
| ·DOX的标准曲线 | 第64页 |
| ·载DOX Fe_3O_4/PMAA微球的制备方法的优化 | 第64-65页 |
| ·DOX加入量的选择 | 第64-65页 |
| ·载药时间的选择 | 第65页 |
| ·载DOX Fe_3O_4/PMAA微球的体外释放 | 第65-66页 |
| ·1×PBS(pH 7.4)体系中释药 | 第66页 |
| ·在乐氏生理盐水体系中释药 | 第66页 |
| ·LVFX的标准曲线 | 第66-67页 |
| ·载LVFX Fe_3O_4/PMAA微球的制备 | 第67-68页 |
| ·不同pH值及微球处理方式对载药的影响 | 第67-68页 |
| ·载药时间对载药的影响 | 第68页 |
| ·载LVFX Fe_3O_4/PMAA微球的体外释放 | 第68-69页 |
| ·1×PBS(pH 7.0)体系中释药 | 第69页 |
| ·1×PBS(pH 9.0)体系中释药 | 第69页 |
| 本章小结 | 第69-71页 |
| 全文总结 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-78页 |
| 致谢 | 第78-80页 |
