| 提要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第13-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一部分 文献综述 | 第16-25页 |
| 1 本草考证 | 第16-18页 |
| 1.1 名称考证 | 第16页 |
| 1.2 产地考证 | 第16页 |
| 1.3 炮制考证 | 第16-18页 |
| 1.4 性味功效 | 第18页 |
| 2 动物资源研究 | 第18页 |
| 3 现代研究概况 | 第18-24页 |
| 3.1 化学成分研究 | 第18-19页 |
| 3.2 检测方法研究 | 第19-20页 |
| 3.3 药理作用 | 第20-23页 |
| 3.4 临床应用 | 第23-24页 |
| 4 小结 | 第24-25页 |
| 第二部分 实验内容 | 第25-115页 |
| 第一章 实验药材常规检测 | 第25-39页 |
| 第一节 性状鉴别与显微鉴别 | 第25-34页 |
| 1 性状鉴别 | 第25-29页 |
| 1.1 实验药材 | 第25-26页 |
| 1.2 实验方法与结果 | 第26-29页 |
| 2 显微鉴别 | 第29-33页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第29页 |
| 2.2 实验方法与结果 | 第29-33页 |
| 3 小结 | 第33-34页 |
| 第二节 薄层色谱鉴别 | 第34-37页 |
| 1 试剂、仪器与样品 | 第34页 |
| 1.1 试剂与仪器 | 第34页 |
| 1.2 实验药材 | 第34页 |
| 2 方法 | 第34-35页 |
| 2.1 供试品的制备 | 第34页 |
| 2.2 标准药材的制备 | 第34页 |
| 2.3 显色剂的配制 | 第34-35页 |
| 2.4 薄层层析 | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-36页 |
| 4 小结 | 第36-37页 |
| 第三节 浸出物含量测定 | 第37-39页 |
| 1 试验材料、仪器和试剂 | 第37页 |
| 1.1 供试药材 | 第37页 |
| 1.2 仪器和试剂 | 第37页 |
| 2 试验方法与结果 | 第37-38页 |
| 3 小结 | 第38-39页 |
| 第二章 全蝎的化学指纹图谱研究 | 第39-90页 |
| 第一节 全蝎的紫外谱线组法研究 | 第39-53页 |
| 1 试验材料、仪器和试剂 | 第40页 |
| 1.1 供试药材 | 第40页 |
| 1.2 仪器和试剂 | 第40页 |
| 2 试验方法 | 第40-41页 |
| 2.1 提取溶液的制备 | 第40页 |
| 2.2 光谱条件 | 第40页 |
| 2.3 方法学考察 | 第40-41页 |
| 2.4 样品测定 | 第41页 |
| 2.5 结果分析 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-52页 |
| 3.1 检测结果 | 第41-44页 |
| 3.2 不同产地全蝎提取溶剂紫外光谱及光谱数据比较 | 第44-45页 |
| 3.3 不同产地同一提取液的紫外吸收峰位与吸收度比较 | 第45-50页 |
| 3.4 聚类分析及相似度评价 | 第50-52页 |
| 4 小结 | 第52-53页 |
| 第二节 全蝎HPLC指纹图谱研究 | 第53-75页 |
| 1 试剂、仪器与样品 | 第53页 |
| 1.1 仪器和试剂 | 第53页 |
| 1.2 供试药材 | 第53页 |
| 2 全蝎HPLC指纹图谱的建立 | 第53-67页 |
| 2.1 供试品提取溶剂的优选 | 第53-56页 |
| 2.2 供试品提取时间的选择 | 第56-57页 |
| 2.3 高效液相色谱条件的选择 | 第57-61页 |
| 2.4 全蝎HPLC色谱条件的确定 | 第61-62页 |
| 2.5 方法学考察 | 第62-67页 |
| 3 结果 | 第67-72页 |
| 3.1 全蝎的HPLC指纹图谱的建立 | 第67-72页 |
| 4 小结 | 第72-75页 |
| 4.1 全蝎HPLC色谱条件的选择 | 第72-74页 |
| 4.2 全蝎HPLC指纹图谱分析 | 第74页 |
| 4.3 展望 | 第74-75页 |
| 第三节 全蝎GC-MS指纹图谱研究 | 第75-90页 |
| 1 试验材料、仪器和试剂 | 第75页 |
| 1.1 仪器和试剂 | 第75页 |
| 1.2 供试药材 | 第75页 |
| 2 方法 | 第75-78页 |
| 2.1 全蝎脂溶性成分的提取、分离 | 第75页 |
| 2.2 GC-MS测定 | 第75-76页 |
| 2.3 方法学考察 | 第76-78页 |
| 3 结果与分析 | 第78-88页 |
| 3.1 不同产地全蝎的总离子流图 | 第78-83页 |
| 3.2 共有峰的识别 | 第83页 |
| 3.3 全蝎脂溶性成分GC-MS特征峰的选择 | 第83-86页 |
| 3.4 不同产地全蝎脂溶性成分聚类分析 | 第86-88页 |
| 4 小结 | 第88-90页 |
| 4.1 不同产地全蝎脂溶性成分分析 | 第88页 |
| 4.2 全蝎脂溶性成分指标的质量控制分析 | 第88-89页 |
| 4.3 聚类结果分析 | 第89-90页 |
| 第三章 全蝎药材的生物指纹图谱研究 | 第90-111页 |
| 第一节 全蝎蛋白聚丙烯酰胺凝胶电泳指纹图谱研究 | 第90-105页 |
| 1 试验材料、仪器和试剂 | 第90-91页 |
| 1.1 仪器和试剂 | 第90-91页 |
| 1.2 供试药材 | 第91页 |
| 2 实验方法 | 第91-95页 |
| 2.1 电泳试剂的配置 | 第91-92页 |
| 2.2 蛋白质提取方法 | 第92页 |
| 2.3 蛋白质含量测定 | 第92-94页 |
| 2.4 蛋白质聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）实验步骤 | 第94-95页 |
| 3 实验结果 | 第95-103页 |
| 3.1 蛋白含量测定结果 | 第95-96页 |
| 3.2 蛋白电泳结果 | 第96-97页 |
| 3.3 蛋白电泳指纹图谱绘制 | 第97-100页 |
| 3.4 聚类分析结果 | 第100-103页 |
| 4 小结 | 第103-105页 |
| 4.1 全蝎蛋白质含量分析 | 第103页 |
| 4.2 全蝎蛋白PAGE电泳分析 | 第103页 |
| 4.3 聚类分析 | 第103-105页 |
| 第二节 全蝎的RAPD研究 | 第105-111页 |
| 1 试验材料、仪器和试剂 | 第105-106页 |
| 1.1 仪器和试剂 | 第105-106页 |
| 1.2 实验药材 | 第106页 |
| 2 试验方法 | 第106-107页 |
| 2.1 DNA的提取 | 第106页 |
| 2.2 PCR反应体系 | 第106-107页 |
| 2.3 数据处理 | 第107页 |
| 3 结果 | 第107-109页 |
| 3.1 RAPD扩增结果 | 第107-108页 |
| 3.2 RAPD扩增多态性分析 | 第108页 |
| 3.3 聚类分析 | 第108-109页 |
| 4 小结 | 第109-111页 |
| 4.1 RAPD扩增结果 | 第109页 |
| 4.2 聚类分析 | 第109-110页 |
| 4.3 指纹图谱分析 | 第110-111页 |
| 第四章 全蝎药材质量标准（草案）及起草说明 | 第111-115页 |
| 1 全蝎质量标准（草案） | 第111-112页 |
| 2 起草说明 | 第112-113页 |
| 3 本课题研究内容与现行药典内容对比 | 第113-115页 |
| 结语 | 第115-119页 |
| 1 全蝎化学指纹图谱研究 | 第115-116页 |
| 1.1 全蝎紫外谱线组法研究 | 第115页 |
| 1.2 全蝎高效液相指纹图谱研究 | 第115-116页 |
| 1.3 全蝎脂溶性成分GC-MS研究 | 第116页 |
| 2 全蝎生物指纹图谱研究 | 第116-117页 |
| 2.1 全蝎聚丙烯酰胺凝胶电泳指纹图谱研究 | 第116页 |
| 2.2 全蝎RAPD生物指纹图谱 | 第116-117页 |
| 3 研究特色与创新点 | 第117页 |
| 4 本研究存在的不足与研究展望 | 第117-119页 |
| 4.1 存在不足 | 第117页 |
| 4.2 研究展望 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-124页 |
| 附录 | 第124-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
| 查新报告 | 第127-134页 |
| 在读期间获奖及发表论文著作 | 第134-136页 |
| 1 获奖情况 | 第134-135页 |
| 2 发表论文 | 第135-136页 |
| 详细摘要 | 第136-143页 |
