| 中文摘要 | 第9-12页 |
| 缩略语 | 第12-14页 |
| 第一章 植物开花的调控机制研究进展 | 第14-35页 |
| 1 开花调控途径 | 第14-22页 |
| 1．1 春化促进途径 | 第15-18页 |
| 1．2 自动促进途径 | 第18页 |
| 1．3 光周期促进途径 | 第18-21页 |
| 1．4 GA促进途径 | 第21页 |
| 1．5 开花抑制途径 | 第21-22页 |
| 2 多条开花调控途径之间的联系 | 第22-25页 |
| 2．1 多条开花调控途径对花分生组织特征基因LEAFY的转录调控 | 第23-24页 |
| 2．2 集中在花时基因FT和SOC1的调控上 | 第24-25页 |
| 3 分生组织特征基因 | 第25-29页 |
| 3．1 花分生组织特征基因 | 第26-27页 |
| 3．2 花序分生组织特征基因 | 第27-28页 |
| 3．3 LFY、AP1/CAL、TFL之间的相互作用决定着分生组织的发育方向 | 第28-29页 |
| 4 高等植物花分生组织特征基因LFY/FLO的研究进展 | 第29-35页 |
| 4．1 LFY基因是花分生组织特征基因 | 第29-30页 |
| 4．2 LFY表达量与拟南芥的成花启动 | 第30-31页 |
| 4．3 LFY的其它功能 | 第31页 |
| 4．4 LFY基因表达的调控 | 第31-32页 |
| 4．5 LFY同源基因的研究 | 第32-35页 |
| 第二章 银杏组织培养及遗传转化研究现状 | 第35-38页 |
| 1 银杏组织培养 | 第35-37页 |
| 1．1 胚胎的离体培养 | 第35页 |
| 1．2 器官、组织培养 | 第35-37页 |
| 1．2．1 子叶 | 第35页 |
| 1．2．2 未成熟胚胚乳 | 第35-36页 |
| 1．2．3 孢子培养 | 第36页 |
| 1．2．4 叶子、叶柄、茎段 | 第36页 |
| 1．2．5 原生质体培养 | 第36页 |
| 1．2．6 胚状体的诱导 | 第36-37页 |
| 2 银杏的转基因研究 | 第37-38页 |
| 第三章 立论依据和研究内容 | 第38-40页 |
| 第四章 木本果树基因组DNA提取方法改良 | 第40-44页 |
| 1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 1．1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 1．2 改进的CTAB法 | 第41-42页 |
| 1．3 紫外分光光度计分析 | 第42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-44页 |
| 第五章 银杏雄株GinLFY全长基因的分离与克隆 | 第44-54页 |
| 1 材料与方法 | 第45-49页 |
| 1．1 材料 | 第45页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第45页 |
| 1．1．2 菌株和质粒 | 第45页 |
| 1．1．3 化学试剂 | 第45页 |
| 1．1．4 寡核苷酸引物 | 第45页 |
| 1．2 方法 | 第45-49页 |
| 1．2．1 基因组DNA的提取 | 第45页 |
| 1．2．2 PCR扩增方法 | 第45-46页 |
| 1．2．2．1 引物设计 | 第45-46页 |
| 1．2．2．2 PCR反应体系 | 第46页 |
| 1．2．3 DNA片段的克隆 | 第46-49页 |
| 1．2．3．1 PCR产物的回收纯化 | 第46-47页 |
| 1．2．3．2 回收产物的连接 | 第47页 |
| 1．2．3．3 感受态细胞制备方法（CaCL_2法） | 第47页 |
| 1．2．3．4 连接产物转化大肠杆菌 | 第47-48页 |
| 1．2．3．5 重组克隆的筛选与鉴定 | 第48页 |
| 1．2．3．6 碱裂解法小批量抽提质粒 | 第48页 |
| 1．2．3．7 重组质粒的酶切 | 第48-49页 |
| 1．3 DNA序列测定 | 第49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-54页 |
| 2．1 PCR产物的获得和克隆 | 第49-51页 |
| 2．2 基因序列与同源性分析 | 第51-54页 |
| 第六章 银杏雄株GinNdly全长基因的分离和克隆 | 第54-60页 |
| 1 材料与方法 | 第54-55页 |
| 1．1 材料 | 第54页 |
| 1．1．1 植物材料、菌株、质粒 | 第54页 |
| 1．1．2 寡核苷酸引物 | 第54页 |
| 1．2 方法 | 第54-55页 |
| 1．2．1 基因组DNA与质粒DNA的提取 | 第54页 |
| 1．2．2 PCR扩增方法 | 第54-55页 |
| 1．2．3 DNA片段重组入质粒载体 | 第55页 |
| 2 结果与讨论 | 第55-60页 |
| 2．1 PCR产物的获得和克隆 | 第55页 |
| 2．2 基因序列测定与结构分析 | 第55-58页 |
| 2．3 讨论 | 第58-60页 |
| 第七章 银杏的组织培养 | 第60-73页 |
| 1 材料与方法 | 第60-61页 |
| 1．1 材料 | 第60页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第60页 |
| 1．1．2 药品 | 第60页 |
| 1．2 方法 | 第60-61页 |
| 2 结果与讨论 | 第61-69页 |
| 2．1 愈伤组织的诱导 | 第61-67页 |
| 2．1．1 不同的生长素对银杏胚切段愈伤组织诱导的影响 | 第61-63页 |
| 2．1．2 NAA与BA,KT和ZT培养银杏子叶的观察 | 第63页 |
| 2．1．3 各种基本培养基诱导愈伤组织效果的比较 | 第63-64页 |
| 2．1．4 银杏各种外植体愈伤组织的诱导 | 第64-65页 |
| 2．1．5 各种抗氧化剂防止银杏愈伤组织褐化的效果 | 第65-66页 |
| 2．1．6 不同培养基上银杏愈伤组织的继代效果 | 第66-67页 |
| 2．1．7 银杏未成熟胚胚乳的培养 | 第67页 |
| 2．2 成熟胚培养快速获得银杏幼苗 | 第67-68页 |
| 2．3 茎段腋芽的萌发 | 第68-69页 |
| 3 讨论 | 第69-73页 |
| 第八章 GinNdly基因的植物表达载体的构建 | 第73-83页 |
| 1 材料与方法 | 第73-77页 |
| 1．1 菌株和质粒 | 第73页 |
| 1．2 酶及生化药剂 | 第73页 |
| 1．3 PCR引物 | 第73页 |
| 1．4 PCR反应 | 第73-74页 |
| 1．5 质粒构建 | 第74-76页 |
| 1．5．1 酶切产物回收方法 | 第74页 |
| 1．5．2 质粒pGdly中GinNdly基因插入方向的辨认 | 第74页 |
| 1．5．3 反向GinNdly基因片断的制备 | 第74页 |
| 1．5．4 正向GinNdly基因片断的制备 | 第74页 |
| 1．5．5 CaMV35S启动子制备 | 第74页 |
| 1．5．6 nos终止子DNA片段制备 | 第74-75页 |
| 1．5．7 元载体pBI121的制备 | 第75页 |
| 1．5．8 元载体pCAMBIA1301的制备 | 第75页 |
| 1．5．9 质粒构建 | 第75-76页 |
| 1．6 农杆菌的转化 | 第76-77页 |
| 1．6．1 采用三亲杂交法将双元载体导入农杆菌菌株 | 第76页 |
| 1．6．2 利用细胞感受态法直接将双元载体导入农杆菌 | 第76-77页 |
| 1．7 农杆菌及农杆菌中质粒鉴定 | 第77页 |
| 1．7．1 1．3-酮基乳糖反应 | 第77页 |
| 1．7．2 农杆菌中质粒的鉴定 | 第77页 |
| 2 结果与讨论 | 第77-83页 |
| 第九章 银杏GinNdly基因转化矮牵牛 | 第83-88页 |
| 1 材料和方法 | 第83-84页 |
| 1．1 材料 | 第83页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第83页 |
| 1．1．2 菌株和质粒 | 第83页 |
| 1．1．3 化学试剂 | 第83页 |
| 1．1．4 寡核苷酸引物 | 第83页 |
| 1．2 方法 | 第83-84页 |
| 1．2．1 矮牵牛的组织培养 | 第83页 |
| 1．2．2 矮牵牛无菌组织的获得 | 第83页 |
| 1．2．3 根癌农杆菌培养 | 第83-84页 |
| 1．2．4 外植体的感染 | 第84页 |
| 1．2．5 矮牵牛基因组DNA快速提取 | 第84页 |
| 1．2．6 转基因植株的鉴定 | 第84页 |
| 2 结果 | 第84-86页 |
| 2．1 培养基中不同激素配比对愈伤组织诱导及不定芽分化的影响 | 第84-85页 |
| 2．2 抗性芽的获得 | 第85页 |
| 2．3 农杆菌浓度对遗传转化的影响 | 第85-86页 |
| 3 讨论 | 第86-88页 |
| 展望和后续研究 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-100页 |
| 英文摘要 | 第100页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 附录 | 第104页 |
