| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第12-33页 |
| 1.1 蜂毒肽的理化性质和药理作用概述 | 第12-13页 |
| 1.2 蜂毒肽抗肿瘤作用研究概述 | 第13-15页 |
| 1.2.1 直接作用于肿瘤细胞膜 | 第13-14页 |
| 1.2.2 促肿瘤细胞凋亡 | 第14-15页 |
| 1.2.3 抗血管生成和免疫调节 | 第15页 |
| 1.3 蜂毒肽的减毒增效研究概述 | 第15-18页 |
| 1.3.1 化学、基因改组蜂毒肽的结构 | 第16页 |
| 1.3.2 与传统化疗药物协同作用 | 第16-17页 |
| 1.3.3 应用新型微纳米药物传递系统 | 第17-18页 |
| 1.4 介孔SiO_2在药物靶向控制释放系统中的应用 | 第18-27页 |
| 1.4.1 纳米材料应用于药物靶向控制释放系统 | 第18-20页 |
| 1.4.2 介孔SiO_2在药物靶向控制释放系统中的应用 | 第20-27页 |
| 1.4.2.1 介孔SiO_2的生物相容性 | 第21-22页 |
| 1.4.2.2 介孔SiO_2的药物装载性能 | 第22页 |
| 1.4.2.3 介孔SiO_2可控释放 | 第22-26页 |
| 1.4.2.4 介孔SiO_2的靶向性 | 第26-27页 |
| 1.5 叶酸(FA)和二硫键在靶向药物控释系统中的应用 | 第27页 |
| 1.6 聚乙二醇在改善药物载体生物相容性方面的应用 | 第27-28页 |
| 1.7 环糊精的包合特性 | 第28-32页 |
| 1.8 选题的目的和意义 | 第32-33页 |
| 第二章 蜂毒肽的分离纯化及鉴定 | 第33-45页 |
| 2.1 试验材料与仪器 | 第33-35页 |
| 2.1.1 药品与试剂 | 第33-35页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第35页 |
| 2.2 试验方法 | 第35-39页 |
| 2.2.1 意蜂蜂毒的采集与粗蜂毒的除杂 | 第35-36页 |
| 2.2.2 凝胶柱层析流动相的配置与装柱 | 第36页 |
| 2.2.3 蜂毒肽的初步鉴定方法 | 第36-37页 |
| 2.2.4 蜂毒肽的分离纯化 | 第37-38页 |
| 2.2.4.1 Sephadex G-25柱层析 | 第37页 |
| 2.2.4.2 Sephadex G-50柱层析 | 第37页 |
| 2.2.4.3 Sephadex G-75柱层析 | 第37-38页 |
| 2.2.5 蜂毒肽的定量 | 第38-39页 |
| 2.2.5.1 HPLC检测波长的确定 | 第38页 |
| 2.2.5.2 色谱条件 | 第38页 |
| 2.2.5.3 蜂毒肽标准曲线的绘制 | 第38页 |
| 2.2.5.4 蜂毒肽样品的测定 | 第38-39页 |
| 2.3 结果与分析 | 第39-42页 |
| 2.3.1 层析结果 | 第39-40页 |
| 2.3.1.1 Sephadex G-25层析结果 | 第39页 |
| 2.3.1.2 Sephadex G-50层析结果 | 第39页 |
| 2.3.1.3 Sephadex G-75层析结果 | 第39-40页 |
| 2.3.2 HPLC检测结果 | 第40-42页 |
| 2.3.2.1 蜂毒肽检测条件的确定 | 第40页 |
| 2.3.2.2 HPLC色谱图 | 第40-42页 |
| 2.3.2.3 蜂毒肽标准曲线的绘制与检测结果 | 第42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-44页 |
| 2.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 基于介孔SiO_2的蜂毒肽吸附试验与细胞内吞评价 | 第45-58页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第45-46页 |
| 3.1.1 材料 | 第45-46页 |
| 3.1.2 仪器 | 第46页 |
| 3.2 试验方法 | 第46-49页 |
| 3.2.1 介孔SiO_2的合成 | 第46-47页 |
| 3.2.2 介孔SiO_2氨基化(MSN-NH_2) | 第47页 |
| 3.2.3 介孔SiO_2羧基化(MSN-COOH) | 第47页 |
| 3.2.4 MSN的二硫键功能化(MSN-S-S-NH_2) | 第47页 |
| 3.2.5 MSNs的TEM表征 | 第47页 |
| 3.2.6 荧光胺法定性检测MSNs表面氨基 | 第47-48页 |
| 3.2.7 MSNs的傅里叶变换红外光谱(FT-IR)表征 | 第48页 |
| 3.2.8 MSNs的ZETA电势及DLS粒径的测定 | 第48页 |
| 3.2.9 MSNs的氮气吸附试验 | 第48页 |
| 3.2.10 蜂毒肽的吸附试验 | 第48页 |
| 3.2.11 细胞内吞试验 | 第48-49页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 3.3.1 纳米介孔SiO_2的表征 | 第49-54页 |
| 3.3.1.1 TEM表征 | 第49-50页 |
| 3.3.1.2 孔径、孔容和比表面积 | 第50-52页 |
| 3.3.1.3 傅里叶变换红外光谱(FT-IR) | 第52页 |
| 3.3.1.4 Zeta电势 | 第52-53页 |
| 3.3.1.5 荧光胺法测定MSNs表面氨基 | 第53-54页 |
| 3.3.2 MSNs吸附蜂毒肽 | 第54-55页 |
| 3.3.3 细胞内吞纳米粒子 | 第55-56页 |
| 3.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第四章 基于环糊精自组装的介孔SiO_2控制释放系统研究 | 第58-72页 |
| 4.1 材料试剂与仪器 | 第59-60页 |
| 4.1.1 材料试剂 | 第59-60页 |
| 4.1.2 仪器 | 第60页 |
| 4.2 试验方法 | 第60-63页 |
| 4.2.1 介孔SiO_2的合成(MSN) | 第60页 |
| 4.2.2 介孔SiO_2氨基化(MSN-NH_2) | 第60页 |
| 4.2.3 PEG功能化MSN的制备(MSN-PEG) | 第60-61页 |
| 4.2.4 COOH-PEG-FA的制备 | 第61页 |
| 4.2.5 叶酸(FA)修饰MSNs的制备(MSN-PEG-FA) | 第61-62页 |
| 4.2.6 MSNs的TEM表征 | 第62页 |
| 4.2.7 MSNs的红外光谱(FT-IR)表征 | 第62页 |
| 4.2.8 MSNs的Zeta电势及DLS粒径的测定 | 第62页 |
| 4.2.9 荧光素钠吸附试验 | 第62页 |
| 4.2.10 α-CD自组装 | 第62页 |
| 4.2.11 淀粉酶酶解释放试验 | 第62-63页 |
| 4.2.12 金刚烷胺竞争性脱附试验 | 第63页 |
| 4.2.13 细胞毒性试验 | 第63页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第63-71页 |
| 4.3.1 纳米介孔SiO_2的表征 | 第63-67页 |
| 4.3.1.1 透射电镜(TEM)表征 | 第64-65页 |
| 4.3.1.2 傅里叶变换红外光谱(FT-IR)表征 | 第65-66页 |
| 4.3.1.3 Zeta电势及粒径 | 第66-67页 |
| 4.3.2 α-淀粉酶酶解试验 | 第67-69页 |
| 4.3.3 盐酸金刚烷胺竞争性脱附试验 | 第69-70页 |
| 4.3.4 细胞毒性试验 | 第70-71页 |
| 4.4 本章小结 | 第71-72页 |
| 第五章 结论与展望 | 第72-74页 |
| 5.1 结论 | 第72页 |
| 5.2 展望 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
