| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-19页 |
| 1.1 光周期成花途径 | 第11-12页 |
| 1.2 光周期信号的传递途径 | 第12-15页 |
| 1.2.1 植物对光周期信号的接受和感应 | 第12页 |
| 1.2.2 光周期信号向生物钟的输入 | 第12-13页 |
| 1.2.3 植物生物钟核心循环系统 | 第13-14页 |
| 1.2.4 生物钟系统对光周期信号的输出 | 第14-15页 |
| 1.3 水稻和拟南芥光周期成花途径的相似性 | 第15-17页 |
| 1.4 CONSTANS基因和GIGANTEA基因结构与功能 | 第17-19页 |
| 1.5 本研究的目的与意义 | 第19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 植物材料及处理 | 第19-20页 |
| 2.1.2 菌株、载体与试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-31页 |
| 2.2.1 RNA的提取 | 第21页 |
| 2.2.2 RT-PCR反转录合成cDNA | 第21页 |
| 2.2.3 DNA的提取 | 第21-22页 |
| 2.2.4 中间片段的克隆 | 第22-23页 |
| 2.2.5 3’race扩增 | 第23-24页 |
| 2.2.6 5’race扩增 | 第24-26页 |
| 2.2.7 基因组DNA的获得 | 第26-27页 |
| 2.2.8 目的片段PCR产物的TA克隆 | 第27-30页 |
| 2.2.9 序列开放阅读框分析 | 第30页 |
| 2.2.10 推定氨基酸理化性质分析 | 第30页 |
| 2.2.11 推定氨基酸序列同源比对 | 第30页 |
| 2.2.12 系统进化树构建 | 第30页 |
| 2.2.13 荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-48页 |
| 3.1 RNA提取及反转录、DNA提取 | 第31-32页 |
| 3.2 HcCOL4基因克隆 | 第32-37页 |
| 3.2.1 CDS全长获得 | 第32-33页 |
| 3.2.2 HcCOL4基因命名 | 第33-34页 |
| 3.2.3 序列开放阅读框分析 | 第34页 |
| 3.2.4 推定氨基酸理化性质分析 | 第34-35页 |
| 3.2.5 推定氨基酸保守结构域 | 第35页 |
| 3.2.6 氨基酸序列同源比对分析 | 第35-37页 |
| 3.2.7 系统进化树构建 | 第37页 |
| 3.3 HcGI基因克隆 | 第37-46页 |
| 3.3.1 CDS全长获得 | 第37-41页 |
| 3.3.2 HcGI基因命名 | 第41页 |
| 3.3.3 序列开放阅读框分析 | 第41页 |
| 3.3.4 推定氨基酸理化性质分析 | 第41页 |
| 3.3.5 推定氨基酸序列同源比对 | 第41-45页 |
| 3.3.6 系统进化树构建 | 第45-46页 |
| 3.4 荧光定量PCR结果 | 第46-48页 |
| 3.4.1 内参(ACTIN)基因片段克隆 | 第46页 |
| 3.4.2 引物溶解曲线 | 第46-47页 |
| 3.4.3 数据分析 | 第47-48页 |
| 4 讨论与展望 | 第48-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 致谢 | 第58页 |