| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1 菊芋简述 | 第11-14页 |
| 1.1 菊芋叶的形态特征 | 第11页 |
| 1.2 菊芋叶的主要化学成分 | 第11页 |
| 1.3 菊芋叶主要化学成分的研究概况 | 第11-14页 |
| 1.3.1 菊芋叶有效成分的提取与鉴定 | 第11-12页 |
| 1.3.2 菊芋叶的抗菌抗虫活性 | 第12-13页 |
| 1.3.3 菊芋叶化学成分生成规律 | 第13-14页 |
| 1.3.4 菊芋叶的抗氧化活性 | 第14页 |
| 2 大孔树脂在分离黄酮类化合物中的应用 | 第14-17页 |
| 2.1 大孔树脂的概述 | 第14-15页 |
| 2.2 大孔树脂分离技术 | 第15-16页 |
| 2.3 大孔树脂在分离黄酮类成分中的应用 | 第16-17页 |
| 3 诱导子简述 | 第17-18页 |
| 3.1 茉莉酸甲酯 | 第17-18页 |
| 3.2 水杨酸 | 第18页 |
| 4 本研究的目的与意义 | 第18-19页 |
| 第二章 诱导子对组培菊芋叶总黄酮的积累研究 | 第19-33页 |
| 1 主要仪器与试剂 | 第19页 |
| 1.1 主要仪器 | 第19页 |
| 1.2 主要材料与试剂 | 第19页 |
| 2 方法 | 第19-23页 |
| 2.1 培养基的配置 | 第19-20页 |
| 2.1.1 MS培养基的配置 | 第19-20页 |
| 2.1.2 其他培养基的配置 | 第20页 |
| 2.2 培养条件 | 第20页 |
| 2.3 供试组培苗的制备 | 第20-21页 |
| 2.3.1 外植体灭菌条件的确定 | 第20-21页 |
| 2.3.2 菊芋无菌苗的制备 | 第21页 |
| 2.3.2.1 菊芋的初代培养 | 第21页 |
| 2.3.2.2 菊芋的增值培养 | 第21页 |
| 2.4 诱导子对组培菊芋叶总黄酮积累的影响 | 第21-23页 |
| 2.4.1 实验设计 | 第21页 |
| 2.4.2 测定样品液的准备 | 第21-22页 |
| 2.4.3 检测方法 | 第22页 |
| 2.4.4 标准曲线的制作 | 第22页 |
| 2.4.5 精密度实验 | 第22页 |
| 2.4.6 重复性实验 | 第22页 |
| 2.4.7 稳定性实验 | 第22页 |
| 2.4.8 加样回收率实验 | 第22-23页 |
| 3 实验结果 | 第23-33页 |
| 3.1 供试组培苗的制备方法 | 第23-26页 |
| 3.1.1 外植体灭菌条件选择的结果 | 第23-25页 |
| 3.1.2 MS培养基作为菊芋初代培养基的效果 | 第25页 |
| 3.1.3 MS培养基作为菊芋继代培养基的效果 | 第25-26页 |
| 3.2 总黄酮的测定方法 | 第26-29页 |
| 3.2.1 标准曲线的制作 | 第26-27页 |
| 3.2.2 精密度实验结果 | 第27-28页 |
| 3.2.3 重复性实验结果 | 第28页 |
| 3.2.4 稳定性实验结果 | 第28页 |
| 3.2.5 加样回收率实验结果 | 第28-29页 |
| 3.3 诱导子影响组培菊芋叶总黄酮结果 | 第29-33页 |
| 3.3.1 茉莉酸甲酯影响组培菊芋叶总黄酮结果 | 第29-31页 |
| 3.3.2 水杨酸影响组培菊芋叶总黄酮结果 | 第31-33页 |
| 第三章 大孔树脂纯化菊芋总黄酮工艺研究 | 第33-43页 |
| 1 主要仪器与试剂 | 第33页 |
| 1.1 主要仪器 | 第33页 |
| 1.2 主要材料与试剂 | 第33页 |
| 2 方法 | 第33-36页 |
| 2.1 菊芋叶粗提物的制备 | 第33页 |
| 2.2 总黄酮测定的方法学考证 | 第33-34页 |
| 2.2.1 重复性试验 | 第33-34页 |
| 2.2.2 稳定性试验 | 第34页 |
| 2.2.3 加样回收率试验 | 第34页 |
| 2.3 树脂的预处理 | 第34页 |
| 2.4 大孔树脂含水量的测定 | 第34页 |
| 2.5 不同树脂静态吸附量的测定 | 第34-35页 |
| 2.6 不同树脂静态解吸率的测定 | 第35页 |
| 2.7 静态吸附动力学的研究 | 第35页 |
| 2.8 不同浓度的乙醇对树脂解吸率的影响 | 第35-36页 |
| 2.9 菊芋叶总黄酮提取液的动态吸附实验 | 第36页 |
| 2.10 大孔树脂的动态解吸附实验 | 第36页 |
| 3 实验结果 | 第36-43页 |
| 3.1 方法学考证结果 | 第36-37页 |
| 3.1.1 重复性实验结果 | 第36页 |
| 3.1.2 稳定性实验结果 | 第36-37页 |
| 3.1.3 加样回收率实验结果 | 第37页 |
| 3.2 不同大孔树脂含水量测定结果 | 第37页 |
| 3.3 不同树脂静态吸附量与解析率测定结果 | 第37-38页 |
| 3.4 静态吸附动力学研究结果 | 第38-40页 |
| 3.4.1 吸附温度对静态吸附动力学影响 | 第39-40页 |
| 3.4.2 样品浓度对静态吸附动力学影响 | 第40页 |
| 3.5 不同浓度的乙醇影响树脂解吸率结果 | 第40页 |
| 3.6 菊芋叶总黄酮提取液的动态吸附实验结果 | 第40-43页 |
| 3.6.1 不同上样速度对吸附量的影响 | 第40-41页 |
| 3.6.2 大孔树脂X-5吸附菊芋叶总黄酮穿透曲线的绘制 | 第41页 |
| 3.6.3 大孔树脂的动态洗脱实验结果 | 第41-43页 |
| 第四章 结论与讨论 | 第43-46页 |
| 1. 讨论 | 第43-44页 |
| 1.1 大孔树脂X-5的存放条件及上样液的处理 | 第43页 |
| 1.2 组培过程中培养基的选择 | 第43页 |
| 1.3 诱导子对组培菊芋叶总黄酮的含量积累影响 | 第43-44页 |
| 1.4 大孔树脂X-5对菊芋叶总黄酮分离的最佳工艺 | 第44页 |
| 2. 全文总结 | 第44-45页 |
| 3. 展望 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 致谢 | 第54页 |