| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-19页 |
| 研究现状、成果 | 第13-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 第一部分 人骨髓干细胞的分离、培养及其作为载体功能的文献回顾研究 | 第19-36页 |
| 1.1 引言 | 第19-21页 |
| 1.2 材料和方法 | 第21-25页 |
| 1.2.1 材料 | 第21-23页 |
| 1.2.2 方法 | 第23-25页 |
| 1.3 结果 | 第25-31页 |
| 1.3.1 hBMSCs的分离和培养及形态学观察 | 第25-27页 |
| 1.3.2 hBMSCs的生长曲线 | 第27-28页 |
| 1.3.3 hBMSCs的特异性表面抗原的流式细胞术鉴定结果 | 第28-29页 |
| 1.3.4 hBMSCs体外诱导分化能力检测 | 第29-31页 |
| 1.3.5 文献检索结果 | 第31页 |
| 1.4 讨论 | 第31-35页 |
| 1.5 小结 | 第35-36页 |
| 第二部分 骨髓干细胞介导的mi R-451通过调控AMPK信号通路治疗胶质瘤的体外研究 | 第36-90页 |
| 2.1 引言 | 第36-38页 |
| 2.2.材料及方法 | 第38-46页 |
| 2.2.1 材料 | 第38-39页 |
| 2.2.2 方法 | 第39-46页 |
| 2.3 结果 | 第46-79页 |
| 2.3.1 hBMSCs感染状态的判定 | 第46-47页 |
| 2.3.2 RT-PCR检测hBMSCs在转染后mi R-451的表达 | 第47-50页 |
| 2.3.3 荧光显微镜下观察胶质瘤细胞系的病毒转染效率，确认稳定感染细胞株的构建 | 第50-52页 |
| 2.3.4 RT-PCR检测胶质瘤细胞系转染后miR-451的基因表达 | 第52-55页 |
| 2.3.5 MTT（噻唑兰比色分析）法分析细胞增殖活性 | 第55-58页 |
| 2.3.6 平板克隆形成能力的测定 | 第58-61页 |
| 2.3.7 流式细胞仪分析细胞周期 | 第61-65页 |
| 2.3.8 Transwell体外迁移实验 | 第65-70页 |
| 2.3.9 划痕（修复）实验检验肿瘤细胞迁移能力 | 第70-73页 |
| 2.3.10 Anexin V检测细胞凋亡 | 第73-78页 |
| 2.3.11 Western blot检测胶质瘤细胞miR-451上调后蛋白质表达变化 | 第78-79页 |
| 2.4 讨论 | 第79-88页 |
| 2.5 小结 | 第88-90页 |
| 第三部分 骨髓干细胞介导的miR-451通过调控AMPK信号通路治疗胶质瘤的体内研究 | 第90-109页 |
| 3.1 前言 | 第90-91页 |
| 3.2 对象和方法 | 第91-95页 |
| 3.2.1 对象 | 第91-93页 |
| 3.2.2 方法 | 第93-95页 |
| 3.3 结果 | 第95-103页 |
| 3.3.1 U87细胞病毒转染效率判定 | 第95-96页 |
| 3.3.2 荷瘤裸鼠一般状态、活体荧光成像、体重变化及生存期情况 | 第96-101页 |
| 3.3.3 治疗后肿瘤细胞恶性表型相关指标的变化 | 第101-103页 |
| 3.4 讨论 | 第103-108页 |
| 3.5 小结 | 第108-109页 |
| 全文结论 | 第109-111页 |
| 论文创新点 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-121页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第121-122页 |
| 综述 干细胞在脑胶质瘤治疗中的研究进展 | 第122-139页 |
| 综述参考文献 | 第132-139页 |
| 致谢 | 第139-141页 |
| 个人简历 | 第141页 |
