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猪肺血管紧张素转化酶分离纯化及抑制机理研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
符号说明第9-14页
第一章 绪论第14-26页
    1.1 高血压疾病的危害及其现状第14页
    1.2 血管紧张素转化酶的概述第14-15页
        1.2.1 血管紧张素转化酶的生物学作用第14-15页
        1.2.2 血管紧张素转化酶的研究进展第15页
    1.3 酶的分离与纯化第15-20页
        1.3.1 细胞破碎第16页
        1.3.2 盐析第16-17页
        1.3.3 凝胶过滤层析第17-18页
        1.3.4 离子交换色谱第18页
        1.3.5 亲和层析法第18-19页
        1.3.6 其他纯化方法第19-20页
    1.4 血管紧张素转化酶抑制剂的研究进展第20-21页
        1.4.1 血管紧张素转化酶抑制肽研究进展第20页
        1.4.2 血管紧张素转化酶抑制药物的发展第20-21页
    1.5 微量量热技术的研究进展第21-24页
        1.5.1 微量量热技术的原理第21-22页
        1.5.2 微量量热技术在酶催化的反应的应用第22页
        1.5.3 微量量热技术在药物蛋白结合的应用第22-23页
        1.5.4 微量量热技术在生命科学研究中的展望第23-24页
    1.6 本课题的研究目的、意义和研究内容第24-26页
第二章 猪肺血管紧张素转化酶的提取工艺优化与分离纯化第26-43页
    2.1 引言第26页
    2.2 试剂和仪器第26-28页
        2.2.1 实验试剂与材料第26-27页
        2.2.2 实验仪器第27-28页
    2.3 实验方法第28-33页
        2.3.1 实验的分析方法第28-29页
            2.3.1.1 蛋白质含量测定第28页
            2.3.1.2 酶活测定方法第28-29页
        2.3.2 预处理猪肺ACE粗提匀浆液第29-30页
            2.3.2.1 超声波破碎结合胰蛋白酶酶解预处理粗提液第29-30页
            2.3.2.2 超声波辅助提取工艺条件考察第30页
        2.3.3 硫酸铵分级沉淀第30-31页
        2.3.4 猪肺ACE的DEAE-FF层析第31-32页
            2.3.4.1 不同洗脱盐浓度梯度下的柱层析第32页
        2.3.5 超滤离心第32-33页
    2.4 结果与讨论第33-41页
        2.4.1 蛋白质含量的测定第33页
        2.4.2 马尿酸含量的测定第33-34页
        2.4.3 超声波破碎联合酶解最优处理方式的选取第34-35页
        2.4.4 超声功率对ACE粗提取的影响第35-36页
        2.4.5 超声时间对ACE粗提取的影响第36-37页
        2.4.6 浆液比对ACE粗提取的影响第37页
        2.4.7 ACE的硫酸铵盐析第37-38页
        2.4.8 DEAE-Sepharose FF阴离子交换层析-超滤离心第38-41页
            2.4.8.1 最适洗脱盐浓度的确定第38-41页
            2.4.8.2 离子交换-超滤离心第41页
    2.5 小结第41-43页
第三章 猪肺ACE的酶学性质第43-54页
    3.1 引言第43页
    3.2 材料与仪器第43-45页
        3.2.1 实验试剂第43-44页
        3.2.2 实验仪器第44-45页
    3.3 实验方法第45-47页
        3.3.1 蛋白含量与酶活测定第45页
        3.3.2 ACE分子量测定第45-47页
            3.3.2.1 SDS-PAGE凝胶电泳储存液配制第45-47页
        3.3.3 猪肺ACE酶学性质的研究第47页
            3.3.3.1 不同温度下的酶催化反应第47页
            3.3.3.2 不同pH值下的酶催化反应第47页
            3.3.3.3 酶催化反应动力学第47页
    3.4 结果与讨论第47-52页
        3.4.1 猪肺ACE分子量测定与质谱鉴定结果第47-49页
        3.4.2 酶学性质的研究结果和讨论第49-52页
            3.4.2.1 最适反应温度第49-50页
            3.4.2.2 最适pH值第50-51页
            3.4.2.3 酶催化反应动力学常数的测定第51-52页
    3.5 小结第52-54页
第四章 猪肺ACE与其抑制剂结合的热力学测定第54-70页
    4.1 引言第54页
    4.2 材料与仪器第54-55页
        4.2.1 材料和实验试剂第54-55页
        4.2.2 实验仪器第55页
    4.3 实验方法第55-58页
        4.3.1 等温滴定量热(ITC)实验第55-56页
        4.3.2 ITC实验原理第56-57页
        4.3.3 猪肺ACE与Lisinopril结合的热力学测定第57页
            4.3.3.1 测定Lisinopril的IC_(50)值第57页
            4.3.3.2 Lisinopril抑制ACE热力学过程第57页
        4.3.4 猪肺ACE与乳源ACEI结合的热力学测定第57-58页
            4.3.4.1 VSLPEW(α-乳清蛋白)的IC_(50)值测定第57-58页
            4.3.4.2 VSLPEW抑制ACE热力学过程第58页
    4.4 结果与讨论第58-69页
        4.4.1 Lisinopril IC_(50)的结果第58-59页
        4.4.2 Lisinopril抑制ACE的热力学实验第59-64页
        4.4.3 VSLPEW IC_(50)的结果第64-65页
        4.4.4 乳源ACEI抑制ACE的结合过程研究第65-69页
    4.5 小结第69-70页
第五章 结论与建议第70-72页
    5.1 结论第70-71页
    5.2 建议第71-72页
参考文献第72-77页
附图1 MALDI-TOFMS质谱鉴定图第77-78页
致谢第78-79页
攻读学位期间发表的学术论文第79页

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