摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第15-31页 |
1.1 DNA诊断 | 第15-19页 |
1.1.1 DNA突变与疾病 | 第15-16页 |
1.1.2 DNA突变的检测 | 第16-18页 |
1.1.3 DNA探针 | 第18-19页 |
1.2 信号放大在DNA检测中的应用 | 第19-30页 |
1.2.1 Biotin-SA体系在DNA检测中的应用 | 第20页 |
1.2.2 PCR在DNA检测中的应用 | 第20-21页 |
1.2.3 电化学在DNA检测中的应用 | 第21-22页 |
1.2.4 荧光在DNA检测中的应用 | 第22页 |
1.2.5 纳米粒子在DNA检测中的应用 | 第22-24页 |
1.2.6 酶在分子检测中的应用 | 第24-26页 |
1.2.7 聚合物辅助信号放大 | 第26-30页 |
1.3 课题的研究意义及研究内容 | 第30-31页 |
1.3.1 课题研究的意义 | 第30页 |
1.3.2 研究内容 | 第30-31页 |
第二章 复合纳米粒子的制备及其性质研究 | 第31-49页 |
2.1 引言 | 第31页 |
2.2 主要试剂及仪器 | 第31-32页 |
2.2.1 试剂 | 第31-32页 |
2.2.2 仪器 | 第32页 |
2.3 实验部分 | 第32-39页 |
2.3.1 聚合物聚维生素C丙烯酸酯-嵌-聚苯乙烯(PAAA-b-PS)的合成 | 第32-35页 |
2.3.2 维生素H封端的聚乙二醇-嵌-聚苯乙烯(biotin-PEG_(4000)-b-PS)的合成 | 第35-38页 |
2.3.3 复合纳米粒子的制备及共自组装条件的优化 | 第38-39页 |
2.4 结果与讨论 | 第39-47页 |
2.4.1 聚合物PAAA-b-PS的合成 | 第39-41页 |
2.4.2 聚合物biotin-PEG_(4000)-b-PS的合成 | 第41-44页 |
2.4.3 复合纳米粒子组装条件的优化 | 第44-47页 |
2.5 本章小结 | 第47-49页 |
第三章 H_2O_2-NP体系用于突变p53基因的检测 | 第49-63页 |
3.1 引言 | 第49页 |
3.2 主要试剂及仪器 | 第49-50页 |
3.2.1 试剂 | 第49页 |
3.2.2 仪器 | 第49-50页 |
3.3 实验部分 | 第50-51页 |
3.3.1 H_2O_2-NP体系对模型DNA的检测 | 第50页 |
3.3.2 pH对H_2O_2-NP聚合体系的影响 | 第50页 |
3.3.3 H_2O_2-NP体系聚合时间的优化 | 第50页 |
3.3.4 H_2O_2-NP体系对突变p53基因的检测 | 第50-51页 |
3.3.5 H_2O_2-NP体系抗干扰能力的研究 | 第51页 |
3.4 结果与讨论 | 第51-61页 |
3.4.1 H_2O_2-NP体系对模型DNA的诊断 | 第51-57页 |
3.4.2 H_2O_2-NP体系对突变p53基因的检测 | 第57-61页 |
3.5 本章小结 | 第61-63页 |
第四章 GO_x-NP体系用于突变p53基因的检测 | 第63-77页 |
4.1 引言 | 第63页 |
4.2 主要试剂及仪器 | 第63-64页 |
4.2.1 试剂 | 第63页 |
4.2.2 仪器 | 第63-64页 |
4.3 实验部分 | 第64-66页 |
4.3.1 GO_x-NP体系动力学研究 | 第64页 |
4.3.2 GO_x-NP体系对模型DNA的检测 | 第64-65页 |
4.3.3 GO_x-NP体系聚合时间的优化 | 第65页 |
4.3.4 GO_x-NP体系对突变p53基因的检测 | 第65页 |
4.3.5 GO_x-NP体系抗干扰能力的考查 | 第65-66页 |
4.4 结果与讨论 | 第66-75页 |
4.4.1 GOx-NP体系对模型DNA的检测 | 第66-72页 |
4.4.2 GOx-NP体系对突变p53基因的检测 | 第72-75页 |
4.5 小结 | 第75-77页 |
第五章 全文总结与展望 | 第77-79页 |
5.1 全文总结 | 第77页 |
5.2 展望 | 第77-79页 |
参考文献 | 第79-83页 |
附录 | 第83-93页 |
致谢 | 第93-95页 |
研究成果及发表的学术论文 | 第95-97页 |
作者简介 | 第97-99页 |
导师简介 | 第99-100页 |
附件 | 第100-101页 |