致谢 | 第4-7页 |
摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
1 文献综述 | 第11-16页 |
1.1 镉污染的来源及现状 | 第11-12页 |
1.1.1 镉污染的来源 | 第11页 |
1.1.2 镉污染的现状 | 第11-12页 |
1.2 镉胁迫对植物的影响 | 第12页 |
1.2.1 镉胁迫对植物生长发育的影响 | 第12页 |
1.2.2 镉胁迫对植物细胞结构的影响 | 第12页 |
1.2.3 镉胁迫对植物生理生化的影响 | 第12页 |
1.3 植物对Cd的吸收、转运及分配过程 | 第12-13页 |
1.3.1 根系对Cd的吸收 | 第12-13页 |
1.3.2 木质部对Cd的装载和运输 | 第13页 |
1.3.3 Cd从韧皮部向籽粒的转移 | 第13页 |
1.4 植物对镉的耐性机制 | 第13-14页 |
1.4.1 植物对镉的限制吸收 | 第13页 |
1.4.2 植物对镉的排斥和区室化作用 | 第13页 |
1.4.3 植物对镉的抗氧化防卫作用 | 第13-14页 |
1.4.4 植物对镉的络合作用 | 第14页 |
1.5 稻米重金属污染的防治方法及研究进展 | 第14-16页 |
1.5.1 不同基因型水稻吸收累积镉的差异 | 第14页 |
1.5.2 筛选和培育籽粒低镉积累水稻品种 | 第14-16页 |
2 引言 | 第16-17页 |
3 材料与方法 | 第17-21页 |
3.1 实验材料 | 第17页 |
3.2 培养与处理方法 | 第17-18页 |
3.2.1 室内试验处理 | 第17页 |
3.2.2 盆栽试验处理 | 第17-18页 |
3.2.3 田间试验处理 | 第18页 |
3.2.4 离体叶片处理 | 第18页 |
3.2.5 Cd的亚细胞分离 | 第18页 |
3.3 Cd含量的测定 | 第18页 |
3.4 光合色素含量的测定 | 第18页 |
3.5 植物螯合肽(PCs)的测定 | 第18-19页 |
3.5.1 样品前处理 | 第18-19页 |
3.5.2 色谱条件 | 第19页 |
3.6 统计方法 | 第19-20页 |
3.6.1 AMMI模型统计分析 | 第19页 |
3.6.2 稳定性参数计算 | 第19-20页 |
3.7 数据分析 | 第20-21页 |
4 结果与分析 | 第21-37页 |
4.1 耐镉特性的遗传多样性分析 | 第21-22页 |
4.2 水稻幼苗根系和地上部Cd吸收动力学特征 | 第22-24页 |
4.3 米氏方程的特征值与Cd积累的关系 | 第24页 |
4.4 基因型和胁迫强度对Cd转运效率的影响 | 第24-25页 |
4.5 水稻幼苗Cd积累量的AMMI模型分析 | 第25-26页 |
4.6 水稻幼苗Cd积累的稳定性分析 | 第26-28页 |
4.7 水稻幼苗Cd吸收特性的基因型差异 | 第28-29页 |
4.8 水稻幼苗细胞壁和原生质体Cd吸收速率的基因型差异 | 第29-30页 |
4.9 Cd在水稻幼苗根系和地上部亚细胞组分中的分布 | 第30-31页 |
4.10 水稻幼苗非蛋白巯基化合物含量的基因型差异 | 第31-32页 |
4.11 Cd胁迫强度对水稻离体叶片光合色素的影响 | 第32-33页 |
4.12 不同年份大田稻米Cd含量的差异 | 第33-34页 |
4.13 盆栽试验和大田试验稻米Cd含量的相关性 | 第34-35页 |
4.14 筛选出的品种与苗期Cd积累量进行验证 | 第35-36页 |
4.15 利用叶片失绿对筛选出的品种进一步验证 | 第36-37页 |
5 结论与讨论 | 第37-42页 |
5.1 结论 | 第37页 |
5.2 讨论 | 第37-42页 |
5.2.1 水稻幼苗Cd吸收动力学特性的遗传多样性分析 | 第37-38页 |
5.2.2 水稻Cd积累量的稳定性分析 | 第38-39页 |
5.2.3 水稻幼苗镉积累特征和离体叶片耐Cd性的基因型差异 | 第39-40页 |
5.2.4 稻米Cd含量的遗传多样性分析 | 第40-42页 |
参考文献 | 第42-49页 |
附录1 | 第49-50页 |
攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第50页 |