摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7页 |
第一章 绪论 | 第11-19页 |
1.1 农药 | 第11页 |
1.2 农药的降解方法 | 第11-14页 |
1.2.1 物理方法 | 第11-12页 |
1.2.2 化学方法 | 第12-13页 |
1.2.3 生物方法 | 第13-14页 |
1.3 腐霉利的化学结构及理化性质 | 第14-15页 |
1.3.1 腐霉利的化学结构 | 第15页 |
1.3.2 腐霉利的理化性质 | 第15页 |
1.4 腐霉利的应用 | 第15-16页 |
1.5 腐霉利的危害 | 第16页 |
1.6 腐霉利降解研究现状 | 第16-17页 |
1.6.1 腐霉利的光化学降解 | 第17页 |
1.6.2 腐霉利的微生物降解 | 第17页 |
1.7 本课题研究内容 | 第17-19页 |
1.7.1 研究意义 | 第17-18页 |
1.7.2 研究目标及内容 | 第18-19页 |
第2章 腐霉利的分析方法 | 第19-22页 |
2.1 材料及仪器 | 第19页 |
2.1.1 试剂 | 第19页 |
2.1.2 仪器 | 第19页 |
2.1.3 无机盐液体培养基的配制 | 第19页 |
2.1.4 标准溶液的配制 | 第19页 |
2.2 高效液相色谱法 | 第19-20页 |
2.2.1 标准曲线绘制 | 第19-20页 |
2.2.2 无机盐液体培养基中腐霉利加标回收率测定 | 第20页 |
2.3 结果与分析 | 第20-21页 |
2.3.1 标准曲线绘制 | 第20-21页 |
2.3.2 液相色谱法谱图 | 第21页 |
2.3.3 基础盐液体培养基中腐霉利加标回收 | 第21页 |
2.4 小结 | 第21-22页 |
第3章 腐霉利降解菌的筛选、分离及鉴定 | 第22-35页 |
3.1 土壤样品来源 | 第22页 |
3.2 材料与仪器 | 第22-24页 |
3.2.1 实验材料 | 第22页 |
3.2.2 培养基组成 | 第22-23页 |
3.2.3 DNA提取剂的配制 | 第23-24页 |
3.3 试验方法 | 第24-29页 |
3.3.1 菌种的驯化 | 第24-25页 |
3.3.2 菌种的分离筛选 | 第25-26页 |
3.3.3 菌株DNA提取及鉴定 | 第26-27页 |
3.3.4 PCR产物的回收与纯化 | 第27-28页 |
3.3.5 DNA片段的克隆 | 第28页 |
3.3.6 蓝白斑筛选及验证 | 第28页 |
3.3.7 质粒DNA的重组 | 第28-29页 |
3.4 结果与分析 | 第29-34页 |
3.4.1 高效菌株的菌落形态 | 第29-30页 |
3.4.2 高效菌株对腐霉利的降解 | 第30-32页 |
3.4.3 降解菌株的DNA测序鉴定 | 第32-34页 |
3.5 小结 | 第34-35页 |
第4章 环境条件对混合菌群生长情况的影响 | 第35-39页 |
4.1 材料仪器 | 第35页 |
4.1.1 供试菌株 | 第35页 |
4.1.2 培养基 | 第35页 |
4.1.3 试剂及仪器 | 第35页 |
4.2 试验方法 | 第35-36页 |
4.2.1 混合菌群T_3的生长曲线测定 | 第35页 |
4.2.2 pH对混合菌群的生长影响 | 第35页 |
4.2.3 温度对混合菌群的生长影响 | 第35-36页 |
4.2.4 农药初始浓度对混合菌群的生长影响 | 第36页 |
4.3 结果与分析 | 第36-38页 |
4.3.1 T_3混合菌群的生长曲线测定 | 第36页 |
4.3.2 确定混合菌群生长的最适pH | 第36-37页 |
4.3.3 确定混合菌群的生长的最适温度 | 第37页 |
4.3.4 确定农药初始浓度对混合菌群生长的影响 | 第37-38页 |
4.4 小结 | 第38-39页 |
第5章 环境条件对混合菌群T3的降解性能的影响 | 第39-44页 |
5.1 材料与方法 | 第39页 |
5.1.1 试验菌株 | 第39页 |
5.1.2 试剂及仪器设备 | 第39页 |
5.2 培养条件对菌株降解性能的影响 | 第39-40页 |
5.4 结果与分析 | 第40-43页 |
5.4.1 正交试验结果 | 第40-43页 |
5.4.2 优化条件前后混合菌群T_3的降解性能的比较 | 第43页 |
5.5 小结 | 第43-44页 |
第6章 结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-50页 |
致谢 | 第50页 |