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农药腐霉利的生物降解研究

摘要第6-7页
Abstract第7页
第一章 绪论第11-19页
    1.1 农药第11页
    1.2 农药的降解方法第11-14页
        1.2.1 物理方法第11-12页
        1.2.2 化学方法第12-13页
        1.2.3 生物方法第13-14页
    1.3 腐霉利的化学结构及理化性质第14-15页
        1.3.1 腐霉利的化学结构第15页
        1.3.2 腐霉利的理化性质第15页
    1.4 腐霉利的应用第15-16页
    1.5 腐霉利的危害第16页
    1.6 腐霉利降解研究现状第16-17页
        1.6.1 腐霉利的光化学降解第17页
        1.6.2 腐霉利的微生物降解第17页
    1.7 本课题研究内容第17-19页
        1.7.1 研究意义第17-18页
        1.7.2 研究目标及内容第18-19页
第2章 腐霉利的分析方法第19-22页
    2.1 材料及仪器第19页
        2.1.1 试剂第19页
        2.1.2 仪器第19页
        2.1.3 无机盐液体培养基的配制第19页
        2.1.4 标准溶液的配制第19页
    2.2 高效液相色谱法第19-20页
        2.2.1 标准曲线绘制第19-20页
        2.2.2 无机盐液体培养基中腐霉利加标回收率测定第20页
    2.3 结果与分析第20-21页
        2.3.1 标准曲线绘制第20-21页
        2.3.2 液相色谱法谱图第21页
        2.3.3 基础盐液体培养基中腐霉利加标回收第21页
    2.4 小结第21-22页
第3章 腐霉利降解菌的筛选、分离及鉴定第22-35页
    3.1 土壤样品来源第22页
    3.2 材料与仪器第22-24页
        3.2.1 实验材料第22页
        3.2.2 培养基组成第22-23页
        3.2.3 DNA提取剂的配制第23-24页
    3.3 试验方法第24-29页
        3.3.1 菌种的驯化第24-25页
        3.3.2 菌种的分离筛选第25-26页
        3.3.3 菌株DNA提取及鉴定第26-27页
        3.3.4 PCR产物的回收与纯化第27-28页
        3.3.5 DNA片段的克隆第28页
        3.3.6 蓝白斑筛选及验证第28页
        3.3.7 质粒DNA的重组第28-29页
    3.4 结果与分析第29-34页
        3.4.1 高效菌株的菌落形态第29-30页
        3.4.2 高效菌株对腐霉利的降解第30-32页
        3.4.3 降解菌株的DNA测序鉴定第32-34页
    3.5 小结第34-35页
第4章 环境条件对混合菌群生长情况的影响第35-39页
    4.1 材料仪器第35页
        4.1.1 供试菌株第35页
        4.1.2 培养基第35页
        4.1.3 试剂及仪器第35页
    4.2 试验方法第35-36页
        4.2.1 混合菌群T_3的生长曲线测定第35页
        4.2.2 pH对混合菌群的生长影响第35页
        4.2.3 温度对混合菌群的生长影响第35-36页
        4.2.4 农药初始浓度对混合菌群的生长影响第36页
    4.3 结果与分析第36-38页
        4.3.1 T_3混合菌群的生长曲线测定第36页
        4.3.2 确定混合菌群生长的最适pH第36-37页
        4.3.3 确定混合菌群的生长的最适温度第37页
        4.3.4 确定农药初始浓度对混合菌群生长的影响第37-38页
    4.4 小结第38-39页
第5章 环境条件对混合菌群T3的降解性能的影响第39-44页
    5.1 材料与方法第39页
        5.1.1 试验菌株第39页
        5.1.2 试剂及仪器设备第39页
    5.2 培养条件对菌株降解性能的影响第39-40页
    5.4 结果与分析第40-43页
        5.4.1 正交试验结果第40-43页
        5.4.2 优化条件前后混合菌群T_3的降解性能的比较第43页
    5.5 小结第43-44页
第6章 结论第44-45页
参考文献第45-50页
致谢第50页

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