| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 第一章 前言 | 第16-40页 |
| 1.1 核酸分子检测的重要意义 | 第16-18页 |
| 1.2 核酸分子的检测方法 | 第18-20页 |
| 1.3 金属有机骨架(MOFs)应用于核酸分子检测 | 第20-22页 |
| 1.4 本课题组对水稳定的MOFs的构筑 | 第22-24页 |
| 1.5 课题组应用对水稳定的MOFs检测核酸分子的研究 | 第24-25页 |
| 1.6 应用MOFs在细胞水平上检测表达异常的miRNA | 第25-29页 |
| 1.7 结合同步荧光技术应用MOFs检测核酸分子 | 第29-30页 |
| 1.8 研究内容及目的 | 第30-32页 |
| 参考文献 | 第32-40页 |
| 第二章 基于Cu(Ⅱ)的3D MOF同步荧光检测EBOV的非编码RNA保守序列和类miRNA | 第40-63页 |
| 2.1 实验部分 | 第41-46页 |
| 2.1.1 实验仪器与试剂 | 第41-42页 |
| 2.1.1.1 实验仪器 | 第41页 |
| 2.1.1.2 实验试剂 | 第41-42页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第42-46页 |
| 2.1.2.1 DNA/RNA溶液的配制与保存 | 第42页 |
| 2.1.2.2 Tris-HCl缓冲溶液的配制 | 第42-43页 |
| 2.1.2.3 TBE缓冲溶液的配制 | 第43页 |
| 2.1.2.4 P-DNA@1的构筑及其对靶向RNA的荧光检测 | 第43-44页 |
| 2.1.2.5 P-DNAs@1的构筑及其同步荧光检测T_1和T_2 | 第44页 |
| 2.1.2.6 荧光淬灭类型的判断及结合常数的计算 | 第44-45页 |
| 2.1.2.7 荧光各向异性实验 | 第45页 |
| 2.1.2.8 聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶电泳实验 | 第45-46页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第46-59页 |
| 2.2.1 {[Cu(Cmdcp)(phen)(H_2O)]_2·9H_2O}_5 (1)的晶体结构 | 第46-47页 |
| 2.2.2 MOF 1的水稳定性分析 | 第47页 |
| 2.2.3 P-DNA@1的构筑及其对靶向RNA的荧光检测 | 第47-51页 |
| 2.2.3.1 P-DNA-1@1和P-DNA-2@1传感平台的构筑 | 第48页 |
| 2.2.3.2 P-DNA-1@1和P-DNA-2@1对T_1和T_2的荧光检测结果 | 第48-51页 |
| 2.2.4 P-DNAs@1的构筑及其对T_1和T_2的同步荧光检测 | 第51-54页 |
| 2.2.4.1 P-DNA-1@1和P-DNA-2@1传感平台的构筑 | 第51-52页 |
| 2.2.4.2 P-DNAs@1传感平台同步荧光检测T_1和T_2 | 第52-54页 |
| 2.2.5 机理探讨 | 第54-59页 |
| 2.2.5.1 荧光淬灭类型的判断和结合常数的测定 | 第55-57页 |
| 2.2.5.2 荧光各向异性实验 | 第57-58页 |
| 2.2.5.3 聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶电泳实验 | 第58-59页 |
| 2.3 本章小结 | 第59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 第三章 基于Cu(Ⅱ)的2D MOF同步荧光检测ZIKV非编码RNA的3 段保守序列 | 第63-75页 |
| 3.1 实验部分 | 第64-66页 |
| 3.1.1 实验仪器与试剂 | 第64-65页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第65-66页 |
| 3.1.2.1 MOF 2的合成 | 第65页 |
| 3.1.2.2 MOF 2的X-射线单晶衍射 | 第65-66页 |
| 3.1.2.3 荧光检测试验方法 | 第66页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第66-73页 |
| 3.2.1 [Cu(Dcbb)(bipy)(H_2O)]_n(2)的晶体结构 | 第66-67页 |
| 3.2.2 MOF 2的水稳定性分析 | 第67页 |
| 3.2.3 MOF 2同步荧光检测T_3,T_4和T_5 | 第67-70页 |
| 3.2.3.1 P-DNAs@2荧光传感平台的构筑 | 第67-68页 |
| 3.2.3.2 P-DNAs@2同步荧光检测T_3,T_4和T_5 | 第68-70页 |
| 3.2.4 机理探讨 | 第70-73页 |
| 3.2.4.1 结合常数的测定 | 第71页 |
| 3.2.4.2 荧光各向异性实验 | 第71-72页 |
| 3.2.4.3 聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶电泳实验 | 第72-73页 |
| 3.3 本章小结 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-75页 |
| 第四章 基于Cu(Ⅱ)的1D MOF荧光检测与胃癌相关的5种miRNAs | 第75-88页 |
| 4.1 实验部分 | 第76-77页 |
| 4.1.1 实验仪器与试剂 | 第76-77页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第77页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第77-85页 |
| 4.2.1 MOF 3荧光检测与胃癌相关的5种miRNA | 第77-81页 |
| 4.2.1.1 MOF 3对5种P-DNA的荧光淬灭实验 | 第77-78页 |
| 4.2.1.2 P-DNA@3传感平台检测靶向的miRNA | 第78-81页 |
| 4.2.2 机理探讨 | 第81-85页 |
| 4.2.2.1 结合常数的测定 | 第82-83页 |
| 4.2.2.2 荧光各向异性实验 | 第83-84页 |
| 4.2.2.3 聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶电泳实验 | 第84-85页 |
| 4.3 本章小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-88页 |
| 第五章 基于Cu(Ⅱ)的3D MOF荧光检测口腔癌组织中异常表达的种miRNAs | 第88-107页 |
| 5.1 实验部分 | 第89-92页 |
| 5.1.1 实验仪器与试剂 | 第89-90页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第90-92页 |
| 5.1.2.1 MOF 4的合成 | 第90-91页 |
| 5.1.2.2 MOF 4的X-射线单晶衍射 | 第91页 |
| 5.1.2.3 荧光检测试验方法 | 第91页 |
| 5.1.2.4 细胞实验方法 | 第91-92页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第92-104页 |
| 5.2.1 {[Cu_2(Cmdcp)_2bipy(H_2O)_2]·0.5H_2O}_n(4)的晶体结构 | 第92-93页 |
| 5.2.2 MOF 4的水稳定性分析 | 第93-94页 |
| 5.2.3 P-DNAs@4传感平台的构筑及其同步荧光检测T_(21),T_(155)和T_(375) | 第94-97页 |
| 5.2.3.1 P-DNAs@4传感平台的构筑 | 第94页 |
| 5.2.3.2 P-DNAs@4传感平台同步荧光检测T_(21),T_(155)和T_(375) | 第94-97页 |
| 5.2.4 P-mDNAs@4传感平台的构筑及其同步荧光检测T_(21),T_(155)和T_(375) | 第97-100页 |
| 5.2.4.1 P-mDNAs@4传感平台的构筑 | 第97页 |
| 5.2.4.2 P-mDNAs@4传感平台同步荧光检测T_(21),T_(155)和T_(375) | 第97-100页 |
| 5.2.5 机理探讨 | 第100-102页 |
| 5.2.5.1 结合常数的测定 | 第100页 |
| 5.2.5.2 荧光各向异性实验 | 第100-101页 |
| 5.2.5.3 聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶电泳实验 | 第101-102页 |
| 5.2.6 细胞实验 | 第102-104页 |
| 5.2.6.1 细胞毒性实验 | 第103页 |
| 5.2.6.2 P-mDNAs@4检测细胞内的miRNA | 第103-104页 |
| 5.3 本章小结 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-107页 |
| 全文总结 | 第107-108页 |
| 附录 | 第108-111页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第111-112页 |
| 致谢 | 第112-113页 |
