| 缩写词中英文对照表 | 第4-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-20页 |
| 1.1 引言 | 第15-19页 |
| 1.1.1 土壤盐渍化概述 | 第15-16页 |
| 1.1.2 沙枣概述 | 第16-17页 |
| 1.1.3 盐胁迫对植物光合影响概述 | 第17-18页 |
| 1.1.4 植物转录组研究概述 | 第18-19页 |
| 1.2 研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 1.3 实验设计 | 第20页 |
| 第二章 NaCl胁迫对大果沙枣生理特性的影响 | 第20-41页 |
| 2.1 实验材料及方法 | 第20-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.2 材料的培养与处理 | 第21页 |
| 2.1.3 幼苗形态 | 第21页 |
| 2.1.4 株高的测量 | 第21页 |
| 2.1.5 生物量的测定 | 第21-22页 |
| 2.1.6 离子含量的测定 | 第22页 |
| 2.1.7 可溶性蛋白含量的测定 | 第22页 |
| 2.1.8 脯氨酸含量的测定 | 第22-23页 |
| 2.1.9 可溶性糖含量的测定 | 第23页 |
| 2.1.10 有机酸含量的测定 | 第23页 |
| 2.1.11 过氧化氢(H_2O_2)含量的测定 | 第23-24页 |
| 2.1.12 超氧阴离子(O_2~-)含量的测定 | 第24-25页 |
| 2.1.13 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第25页 |
| 2.1.14 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第25页 |
| 2.1.15 抗坏血酸过氧化酶(APX)活性的测定 | 第25-26页 |
| 2.1.16 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第26页 |
| 2.1.17 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第26页 |
| 2.1.18 光合参数的测定 | 第26页 |
| 2.1.19 数据统计分析 | 第26页 |
| 2.2 实验结果 | 第26-39页 |
| 2.2.1 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗形态的影响 | 第26-27页 |
| 2.2.2 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗株高的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.3 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗地上部分干、鲜重的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.4 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗地下部分干、鲜重的影响 | 第29-30页 |
| 2.2.5 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗地上部分和地下部分含水量的影响 | 第30-31页 |
| 2.2.6 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗无机离子含量的影响 | 第31-33页 |
| 2.2.7 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗可溶性蛋白、可溶性糖、脯氨酸和有机酸含量的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.8 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗H_2O_2和O_2~-含量的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.9 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗CAT、SOD、APX和POD活性的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.10 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗MDA含量的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.11 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗光合参数的影响 | 第37-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-41页 |
| 第三章 NaCl胁迫下大果沙枣转录组测序及分析 | 第41-50页 |
| 3.1 实验材料及方法 | 第41-43页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第41页 |
| 3.1.2 材料的培养与处理 | 第41页 |
| 3.1.3 大果沙枣幼苗转录组测序 | 第41页 |
| 3.1.4 大果沙枣幼苗叶片总RNA的提取 | 第41-42页 |
| 3.1.5 大果沙枣幼苗叶片cDNA的合成 | 第42页 |
| 3.1.6 实时定量荧光PCR | 第42-43页 |
| 3.2 实验结果 | 第43-50页 |
| 3.2.1 转录组结果概述 | 第43页 |
| 3.2.2 GO数据库注释结果统计 | 第43-44页 |
| 3.2.3 COG数据库注释结果统计 | 第44页 |
| 3.2.4 KEGG通路注释结果统计 | 第44-47页 |
| 3.2.5 NaCl胁迫对不同注释功能中差异表达基因数量的影响 | 第47-49页 |
| 3.2.6 实时定量荧光PCR验证转录组数据的可靠性 | 第49-50页 |
| 3.3 讨论 | 第50页 |
| 第四章 NaCl胁迫对大果沙枣光合的影响及其机制 | 第50-63页 |
| 4.1 实验材料及方法 | 第50-51页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第50页 |
| 4.1.2 材料的培养与处理 | 第50页 |
| 4.1.3 叶绿素含量的测定 | 第50-51页 |
| 4.1.4 镁离子螯合酶(magnesium-chelatase)活性与含量的的测定 | 第51页 |
| 4.1.5 PSII最大量子产量Fv/Fm、PSII实际光化学效率 ΦPSII、固定荧光Fo和非光化学猝灭NPQ的测定 | 第51页 |
| 4.1.6 光系统I (ΔI/Io)的测定 | 第51页 |
| 4.1.7 核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶(Rubisco)活性与含量的测定 | 第51页 |
| 4.2 实验结果 | 第51-62页 |
| 4.2.1 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗光合天线蛋白通路的影响 | 第51-52页 |
| 4.2.2 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗叶绿素含量的影响 | 第52-54页 |
| 4.2.3 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗叶绿素生物合成通路的影响 | 第54-56页 |
| 4.2.4 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗镁离子螯合酶活性与含量的影响 | 第56-57页 |
| 4.2.5 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗荧光参数的影响 | 第57-58页 |
| 4.2.6 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗光系统I的影响 | 第58-59页 |
| 4.2.7 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗光合通路的影响 | 第59-60页 |
| 4.2.8 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗光合生物碳固定通路的影响 | 第60-62页 |
| 4.2.9 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶活性与含量的影响 | 第62页 |
| 4.3 讨论 | 第62-63页 |
| 第五章 NaCl胁迫对大果沙枣激素的影响 | 第63-75页 |
| 5.1 实验材料及方法 | 第63-64页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第63页 |
| 5.1.2 材料的培养与处理 | 第63页 |
| 5.1.3 脱落酸(ABA)含量的测定 | 第63-64页 |
| 5.1.4 赤霉素(GA)含量的测定 | 第64页 |
| 5.1.5 细胞分裂素(CTK)含量的测定 | 第64页 |
| 5.1.6 9-顺式-环氧类胡萝卜素双加氧酶活性的测定 | 第64页 |
| 5.1.7 赤霉素20氧化酶活性的测定 | 第64页 |
| 5.1.8 细胞分裂素合酶活性的测定 | 第64页 |
| 5.2 实验结果 | 第64-73页 |
| 5.2.1 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗ABA含量的影响 | 第64-65页 |
| 5.2.2 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗ABA合成通路的影响 | 第65-67页 |
| 5.2.3 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗 9-顺式-环氧类胡萝卜素双加氧酶活性的影响 | 第67-68页 |
| 5.2.4 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗GA含量的影响 | 第68页 |
| 5.2.5 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗GA生物合成通路的影响 | 第68-70页 |
| 5.2.6 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗赤霉素20氧化酶活性的影响 | 第70页 |
| 5.2.7 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗CTK含量的影响 | 第70-71页 |
| 5.2.8 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗CTK合成通路的影响 | 第71-72页 |
| 5.2.9 NaCl胁迫对大果沙枣幼苗细胞分裂素合酶活性的影响 | 第72-73页 |
| 5.3 讨论 | 第73-75页 |
| 第六章 实验总结与创新 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-84页 |
| 研究生期间发表的文章 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85页 |
