摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5页 |
缩略词中英文对照表 | 第8-9页 |
第一章 癌症干细胞表面标志物研究进展(文献综述) | 第9-13页 |
1.1 癌症干细胞的典型生物学特征 | 第9-10页 |
1.1.1 自我更新能力和异质性 | 第9页 |
1.1.2 致瘤性和转移能力 | 第9-10页 |
1.1.3 耐药性和射线抗性 | 第10页 |
1.2 癌症干细胞表面标志物的种类及其功能 | 第10-12页 |
1.3 问题与展望 | 第12-13页 |
第二章 瘦素受体表达对HeLa细胞生物学功能影响的研究 | 第13-43页 |
2.1 引言 | 第13页 |
2.2 实验材料与溶液配制 | 第13-15页 |
2.2.1 主要仪器设备 | 第13-14页 |
2.2.2 实验材料 | 第14页 |
2.2.3 主要实验试剂和耗材 | 第14页 |
2.2.4 主要试剂配制 | 第14-15页 |
2.3 实验方法 | 第15-24页 |
2.3.1 HeLa细胞的培养 | 第15-16页 |
2.3.2 检测CD295在HeLa细胞中的表达情况 | 第16-18页 |
2.3.3 CD295~+HeLa细胞的获得 | 第18-19页 |
2.3.4 稳定表达pGCsi-CD295的HeLa细胞的筛选 | 第19-21页 |
2.3.4.5 G418筛选挑稳定转染单克隆 | 第21页 |
2.3.5 细胞增殖能力检测 | 第21-22页 |
2.3.6 克隆形成能力检测 | 第22页 |
2.3.7 迁移能力检测 | 第22-23页 |
2.3.8 侵袭能力检测 | 第23页 |
2.3.9 细胞周期检测 | 第23-24页 |
2.4 实验结果 | 第24-41页 |
2.4.1 HeLa细胞的培养 | 第24页 |
2.4.2 HeLa细胞表达CD295的情况 | 第24-26页 |
2.4.3 干扰质粒载体转染 | 第26-31页 |
2.4.4 高表达CD295使HeLa细胞克隆形成能力加强 | 第31-33页 |
2.4.5 高表达CD295使HeLa细胞迁移能力加强 | 第33-35页 |
2.4.6 高表达CD295使HeLa细胞侵袭能力加强 | 第35-37页 |
2.4.7 高表达CD295的HeLa细胞更耐受抗肿瘤药物紫杉醇 | 第37-39页 |
2.4.8 流式细胞仪检测结果显示CD295表达影响HeLa细胞周期分布 | 第39-41页 |
2.5 讨论 | 第41-42页 |
2.6 结论 | 第42-43页 |
参考文献 | 第43-50页 |
致谢 | 第50页 |