| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-24页 |
| 1 植物成花途径 | 第12-20页 |
| 1.1 春化启动途径 | 第13-16页 |
| 1.1.1 春化作用的特点与影响因素 | 第13-14页 |
| 1.1.2 春化促进途径机理研究 | 第14-16页 |
| 1.2 GA促进途径 | 第16-17页 |
| 1.3 光周期促进途径 | 第17-19页 |
| 1.4 自主促进途径 | 第19页 |
| 1.5 成花抑制途径 | 第19-20页 |
| 2 菊属植物成花研究进展 | 第20-22页 |
| 3 本研究的目的及意义 | 第22-24页 |
| 第二章 夏菊再生体系建立及转基因材料筛选 | 第24-32页 |
| 1 材料与方法 | 第25-26页 |
| 1.1 试验材料、试剂与仪器 | 第25页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 1.1.2 试剂与仪器 | 第25页 |
| 1.2 研究方法 | 第25-26页 |
| 1.2.1 无菌苗的获得 | 第25页 |
| 1.2.2 不同浓度生长素组合对愈伤组织形成和分化的影响 | 第25-26页 |
| 1.2.3 生根和快速繁殖 | 第26页 |
| 1.3 数据处理 | 第26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-30页 |
| 2.1 无菌苗的获得 | 第26-27页 |
| 2.2 不同浓度生长调节剂组合对愈伤组织形成率的影响 | 第27-28页 |
| 2.3 不同浓度生长调节剂组合对出芽率的影响 | 第28-30页 |
| 2.4 生根和快速繁殖 | 第30页 |
| 3 结论 | 第30-32页 |
| 第三章 CmFLC-like1的克隆与功能研究 | 第32-46页 |
| 1 材料与方法 | 第33-37页 |
| 1.1 植物材料与菌株 | 第33页 |
| 1.2 试剂与仪器 | 第33-34页 |
| 1.3 RNA提取和纯度检测 | 第34页 |
| 1.4 菊花CmFLC-like1基因全长的获得 | 第34页 |
| 1.5 序列分析和系统进化树构建 | 第34页 |
| 1.6 载体构建 | 第34-35页 |
| 1.7 亚细胞定位分析 | 第35-36页 |
| 1.8 转录激活活性分析 | 第36页 |
| 1.9 荧光实时定量PCR | 第36-37页 |
| 1.10 拟南芥遗传转化 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-43页 |
| 2.1 CmFLC-like1基因克隆和序列分析 | 第37-39页 |
| 2.2 亚细胞定位分析 | 第39-40页 |
| 2.3 转录活性分析 | 第40-41页 |
| 2.4 CmFLC-like1表达模式分析 | 第41-43页 |
| 2.5 拟南芥CmFLC-like1转基因植株检测 | 第43页 |
| 3 结论 | 第43-46页 |
| 第四章 AtFLC的克隆及菊花'优香,遗传转化 | 第46-54页 |
| 1 材料与方法 | 第46-48页 |
| 1.1 植物材料与菌株 | 第46-47页 |
| 1.2 试剂与仪器 | 第47页 |
| 1.3 RNA提取和纯度检测 | 第47页 |
| 1.4 拟南芥AtFLC基因全长的获得 | 第47页 |
| 1.5 pMDC43-AtFLC表达载体构建 | 第47-48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-51页 |
| 2.1 拟南芥AtFLC基因全长的获得 | 第48-49页 |
| 2.2 载体构建 | 第49页 |
| 2.3 转基因菊花的分子鉴定 | 第49-51页 |
| 3 结论 | 第51-54页 |
| 全文结论 | 第54-56页 |
| 创新之处 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 附录 | 第66-80页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
