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Musclin基因对成肌细胞增殖、葡萄糖摄取和氨基酸分解的影响及其分子机制

摘要第1-10页
前言第10-11页
文献综述第11-16页
 1 骨骼肌与糖代谢第11-14页
   ·PI3K-AKT通路第11-12页
   ·GLUT4第12-13页
   ·PPARγ-LXRα通路第13-14页
 2 Musclin基因的研究进展第14-15页
   ·Musclin基因的发现和结构第14页
   ·Musclin基因的生物学功能第14-15页
 3 肌卫星细胞研究进展第15-16页
本研究的立项依据和研究意义第16-17页
试验一 Musclin基因过表达和沉默成肌细胞增殖、葡萄糖摄取、氨基酸分解及其相关基因表达的影响及其作用机制第17-40页
 1 试验材料第17-18页
   ·细胞第17页
   ·主要试剂第17页
   ·主要仪器第17-18页
   ·常用试剂配制第18页
 2 试验方法第18-24页
   ·小鼠C2C12细胞的传代培养第18页
   ·pcDNA3.1(+)-musclin真核表达载体和pcDNA3.1(+)的无内毒素质粒DNA提取第18-19页
   ·小鼠C2C12细胞的转染第19-20页
   ·细胞RNA提取第20-21页
   ·RNA电泳第21页
   ·反转录第21页
   ·荧光定量PCR第21-23页
     ·荧光定量PCR的引物第21-22页
     ·RT-PCR反应用量及反应条件第22-23页
   ·营养指标测定第23-24页
     ·培养液中葡萄糖浓度的测定第23页
     ·培养液中尿素氮浓度测定第23-24页
 3 结果与分析第24-36页
   ·小鼠成肌细胞C2C12瞬时转染试验的效率结果第24-25页
   ·不同转染组小鼠成肌细胞RNA提取结果第25页
   ·不同处理组中musclin mRNA表达差异第25-27页
   ·Musclin基因表达差异对小鼠成肌细胞增殖的影响第27-28页
   ·Musclin基因表达差异对营养指标的影响第28-30页
     ·Musclin基因过表达和沉默对培养液中葡萄糖含量的影响第28-29页
     ·Musclin基因过表达和沉默对培养液中尿素氮含量的影响第29-30页
   ·Musclin基因过表达和沉默对各相关基因表达的影响第30-36页
     ·不同转染组AKT1 mRNA表达的差异第30-31页
     ·不同转染组AKT2 mRNA表达的差异第31-32页
     ·不同转染组PI3K p110 mRNA表达的差异第32-33页
     ·不同转染组PPARγ mRNA表达的差异第33-34页
     ·不同转染组LXRα mRNA表达的差异第34-35页
     ·不同转染组GLUT4 mRNA表达的差异第35-36页
 4 讨论第36-40页
   ·关于实时荧光定量PCR第36页
   ·Musclin基因的过表达和沉默效果第36-37页
   ·Musclin基因过表达和沉默对细胞增殖的作用第37-38页
   ·Musclin基因过表达和沉默对葡萄糖和尿素氮的影响第38-39页
   ·Musclin基因过表达和沉默对相关基因表达的影响第39-40页
试验二 绵羊骨骼肌肌卫星细胞的分离与鉴定第40-49页
 1 试验材料第40页
   ·动物组织第40页
   ·细胞试验相关试剂和分子生化试剂第40页
   ·试验仪器第40页
   ·常用试剂的配制与缓冲液第40页
 2 试验方法第40-45页
   ·绵羊骨骼肌肌卫星细胞的原代培养与纯化第40-41页
   ·绵羊骨骼肌肌卫星细胞的传代培养第41页
   ·绵羊肌卫星细胞的冻存和复苏第41-42页
   ·绵羊肌卫星细胞的鉴定第42-45页
     ·Myostatin基因的扩增第42-44页
       ·细胞RNA的提取第42-43页
       ·RNA电泳第43页
       ·反转录第43页
       ·RT-PCR扩增绵羊Myostatin基因第43-44页
     ·Desmin细胞免疫化学第44-45页
     ·绵羊肌卫星细胞的分化第45页
 3 结果与分析第45-48页
   ·RNA提取结果第45-46页
   ·绵羊Myostatin基因PCR扩增第46-47页
   ·Desmin细胞免疫化学第47页
   ·绵羊肌卫星细胞细胞分化结果第47-48页
 4 讨论第48-49页
   ·绵羊肌卫星细胞内Myostatin基因的PCR扩增第48页
   ·关于免疫细胞化学第48-49页
   ·有关细胞分化第49页
全文结论第49-50页
参考文献第50-54页
Abstract第54-58页
致谢第58页

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