| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-19页 |
| ·蒙药蓝盆花 | 第12-14页 |
| ·蒙药蓝盆花简介 | 第12页 |
| ·蓝盆花化学成分研究进展 | 第12-13页 |
| ·化学成分含量分析 | 第12页 |
| ·化学成分研究概况 | 第12-13页 |
| ·蓝盆花的药理作用与生物活性 | 第13-14页 |
| ·蓝盆花的药理作用 | 第13页 |
| ·蓝盆花的生物活性 | 第13-14页 |
| ·高脂血症 | 第14-18页 |
| ·高脂血症的危害 | 第14-15页 |
| ·高脂血症目前治疗状况 | 第15-16页 |
| ·高脂血症动物模型 | 第16-18页 |
| ·传统高脂血症模型 | 第16页 |
| ·新型豚鼠高脂血症模型 | 第16-18页 |
| ·豚鼠血浆脂蛋白组成及血浆胆固醇转运方式相似 | 第17页 |
| ·肝脏游离胆固醇所占比重肝脏游离胆固醇与总胆固醇比例 | 第17页 |
| ·肝脏胆固醇代谢能力 | 第17-18页 |
| ·本课题研究目的和意义 | 第18-19页 |
| ·蒙药蓝盆花研究的目的和意义 | 第18页 |
| ·高脂血症动物模型研究的目的和意义 | 第18-19页 |
| 第二章 蓝盆花的化学成分研究 | 第19-29页 |
| ·仪器及材料 | 第19页 |
| ·药材来源及鉴定 | 第19-20页 |
| ·窄叶蓝盆花化学成分的提取与分离纯化 | 第20-24页 |
| ·窄叶蓝盆花花序化学成分的提取 | 第20-21页 |
| ·窄叶蓝盆花花序化学成分的分离纯化 | 第21-24页 |
| ·氯仿萃取物Ⅰ的分离与纯化 | 第21-22页 |
| ·正丁醇萃取物Ⅱ的分离与纯化 | 第22-24页 |
| ·结构分析鉴定 | 第24-26页 |
| ·核磁结果分析 | 第24-25页 |
| ·UPLC-DAD-ESI-MS分析 | 第25-26页 |
| ·LC-MS测试条件 | 第25页 |
| ·UPLC-DAD-ESI-MS分析结果 | 第25-26页 |
| ·波层色谱(TLC)分析 | 第26页 |
| ·结果和讨论 | 第26-29页 |
| 第三章 蓝盆花花序中单体化合物的体外活性研究 | 第29-34页 |
| ·材料与仪器设备 | 第29页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·实验仪器 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-31页 |
| ·清除DPPH游离基活性实验 | 第29-31页 |
| ·溶液的配制 | 第29页 |
| ·实验原理 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-31页 |
| ·α-葡萄糖苷酶抑制活性实验 | 第31页 |
| ·溶液的配制 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31页 |
| ·结果和讨论 | 第31-34页 |
| ·窄叶蓝盆花化合物清除DPPH游离基活性的作用 | 第31页 |
| ·窄叶蓝盆花化合物对α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用 | 第31-34页 |
| 第四章 豚鼠高脂血症模型胆固醇代谢紊乱的分子机制及与大鼠比较 | 第34-58页 |
| ·实验材料 | 第34-36页 |
| ·动物 | 第34页 |
| ·饲料 | 第34-35页 |
| ·试剂 | 第35页 |
| ·仪器 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-43页 |
| ·动物分组及模型建立 | 第36页 |
| ·一般观察 | 第36页 |
| ·血脂测定 | 第36-37页 |
| ·肝脂测定 | 第37页 |
| ·肝脂总胆固醇和游离胆固醇的测定 | 第37页 |
| ·肝脏胆固醇酯测定 | 第37页 |
| ·肝脏总甘油三酯含量 | 第37页 |
| ·肝脏胆固醇7α-羟化酶活性测定 | 第37-38页 |
| ·肝脏CYP7A1微粒体制备 | 第37页 |
| ·肝脏CYP7A1酶活力测定 | 第37-38页 |
| ·实时荧光定量PCR法检测肝脏CYP7A1、FXR、HNF-1α、PXR、LXRα、PPARα、PGC-1α、HNF-4α mRNA相对表达 | 第38-41页 |
| ·总RNA提取 | 第38-39页 |
| ·RNA纯度及浓度检测 | 第39页 |
| ·反转录 | 第39页 |
| ·扩增 | 第39-41页 |
| ·Western blot法半定量测检肝脏FXR、PXR、LXRα、PPARα、PGC-1α蛋白的表达 | 第41-43页 |
| ·蛋白浓度检测 | 第41-42页 |
| ·制胶 | 第42页 |
| ·样品处理 | 第42页 |
| ·电泳 | 第42页 |
| ·半干转膜 | 第42页 |
| ·5%脱脂奶封闭 | 第42页 |
| ·抗体杂交 | 第42页 |
| ·检测 | 第42-43页 |
| ·统计学处理 | 第43页 |
| ·结果与分析 | 第43-55页 |
| ·一般观察 | 第43页 |
| ·豚鼠和大鼠血浆脂质水平 | 第43-47页 |
| ·豚鼠和大鼠肝脏脂质水平 | 第47-50页 |
| ·CYP7A1酶活 | 第50页 |
| ·肝脏CYP7A1、FXR、HNF-1α、LXRα、PPARα、HNF-4α、PGC-1α的mRNA相对表达变化 | 第50-52页 |
| ·高脂饲料诱导后豚鼠肝脏蛋白水平的变化 | 第52-55页 |
| ·讨论 | 第55-58页 |
| ·豚鼠和大鼠对高脂饲料敏感性 | 第55页 |
| ·豚鼠和大鼠肝脂组分的不同 | 第55页 |
| ·豚鼠和大鼠胆固醇代谢差异 | 第55-58页 |
| ·正性调控因子 | 第55-56页 |
| ·负性调控因子 | 第56-58页 |
| ·FXR反馈抑制途径 | 第56页 |
| ·孕烷x受体(PXR)的抑制效应 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 附图 | 第64-71页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第71页 |
