| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-22页 |
| ·废用性肌萎缩的国内外研究进展 | 第12-19页 |
| ·动物实验模型在废用性肌萎缩中的应用 | 第12-13页 |
| ·判定废用性肌萎缩的方法 | 第13-14页 |
| ·废用条件对骨骼肌结构形态以及功能的影响 | 第14-16页 |
| ·废用性肌萎缩的发生及作用机制 | 第16-18页 |
| ·废用性肌萎缩的防治 | 第18-19页 |
| ·冬眠动物抗废用性肌萎缩的近期研究进展 | 第19-20页 |
| ·冬眠过程中骨骼肌结构形态的研究变化 | 第19-20页 |
| ·冬眠过程中骨骼肌蛋白表达的改变 | 第20页 |
| ·冬眠过程中骨豁肌韩离子浓度的变化 | 第20页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 废用对冬眠动物及非冬眠动物骨骼肌肌纤维Ca~(2+)浓度的影响以及川芎嗪的对抗作用 | 第22-31页 |
| ·前言 | 第22页 |
| ·材料和方法 | 第22-24页 |
| ·实验动物与分组 | 第23页 |
| ·实验条件下建立的废用性肌萎缩模型 | 第23页 |
| ·药品的制备及给药 | 第23页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第23-24页 |
| ·腓肠肌肌纤维胞浆Ca~(2+)浓度的测定 | 第24页 |
| ·图像分析和数据统计 | 第24页 |
| ·实验结果 | 第24-29页 |
| ·单根肌纤维质量的判定 | 第24-25页 |
| ·冬眠不同时期黄鼠腓肠肌肌纤维Ca~(2+)浓度 | 第25-27页 |
| ·各组大鼠腓肠肌肌纤维Ca~(2+)浓度 | 第27-29页 |
| ·讨论 | 第29-31页 |
| ·冬眠不同时期对达乌尔黄鼠(Spermophilus dauricus)腓肠肌肌纤维内钙离子浓度的影响 | 第29-30页 |
| ·后肢去负荷14d及川芎嗪灌胃对大鼠腓肠肌肌纤维钙离子浓度的影响 | 第30-31页 |
| 第三章 废用对冬眠动物及非冬眠动物骨骼肌琥珀酸脱氢酶(SDH)的影响以及川芎嗪的对抗作用 | 第31-37页 |
| ·前言 | 第31页 |
| ·材料和方法 | 第31-33页 |
| ·实验动物与分组 | 第31页 |
| ·实验条件下建立的废用性肌萎缩模型 | 第31-32页 |
| ·药品的制备及给药 | 第32页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第32页 |
| ·线粒体标志酶琥珀酸脱氢酶活性的测定 | 第32-33页 |
| ·数据统计和分析 | 第33页 |
| ·实验结果 | 第33-34页 |
| ·冬眠不同时期达乌尔黄鼠腓肠肌SDH活性的变化 | 第33页 |
| ·各组大鼠腓肠肌SDH的活性 | 第33-34页 |
| ·讨论 | 第34-37页 |
| ·冬眠不同时期对达乌尔黄鼠腓肠肌SDH活性的影响 | 第34-35页 |
| ·后肢去负荷14d及川芎嗪灌胃对大鼠腓肠肌SDH活性的影响 | 第35-37页 |
| 第四章 废用对冬眠动物及非冬眠动物骨骼肌Bax mRNA和Bcl-2 mRNA的影响以及川芎嗪的对抗作用 | 第37-48页 |
| ·前言 | 第37页 |
| ·材料与方法 | 第37-40页 |
| ·实验动物与分组 | 第37-38页 |
| ·实验室条件下建立的废用性肌萎缩模型 | 第38页 |
| ·药品的制备及给药 | 第38页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第38页 |
| ·实时定量PCR实验方法 | 第38-40页 |
| ·实时定量PCR引物的设计 | 第40页 |
| ·数据统计和分析 | 第40页 |
| ·实验结果 | 第40-46页 |
| ·Bax、Bcl-2引物特异性检测及退火温度的检测 | 第40-41页 |
| ·冬眠不同时期达乌尔黄鼠腓肠肌Bax mRNA和Bcl-2 mRNA相对表达量的变化及Bax/Bcl-2比率的变化 | 第41-43页 |
| ·各组大鼠腓肠肌Bax mRNA和Bcl-2 mRNA相对表达量的变化及Bax/Bcl-2比率的变化 | 第43-46页 |
| ·讨论 | 第46-48页 |
| ·冬眠不同时期达乌尔黄鼠腓肠肌Bax mRNA和Bcl-2 mRNA相对表达量的变化及Bax/Bcl-2比率的变化 | 第46页 |
| ·各组大鼠腓肠肌Bax mRNA和Bcl-2 mRNA相对表达量的变化及Bax/Bcl-2比率的变化 | 第46-48页 |
| 结论与创新点 | 第48-49页 |
| 不足与展望 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 附录 | 第56-57页 |
| 攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
