利用snc1基因改良超级杂交稻亲本0389和双8S抗性的研究
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-9页 |
1 前言 | 第9-22页 |
·植物转基因技术在农作物改良过程中的应用 | 第9-10页 |
·农杆菌转化法概述 | 第10-14页 |
·农杆菌简介 | 第10-11页 |
·农杆菌Ti质粒的改造及载体构建 | 第11-12页 |
·T-DNA导入植物的分子机理 | 第12-13页 |
·Ti质粒的常用转化方法 | 第13页 |
·农杆菌介导法水稻遗传转化研究的相关进展 | 第13-14页 |
·农杆菌介导法改良籼稻品种研究现状 | 第14-16页 |
·植物抗病相关研究 | 第16-21页 |
·植物和病原生物互作 | 第16-17页 |
·植物抗病相关基因的分类 | 第17页 |
·植物抗病机理 | 第17-18页 |
·植物抗病信号的传导过程 | 第18-19页 |
·SNC1的信号途径 | 第19-21页 |
·本研究的目的与意义 | 第21-22页 |
2 材料与方法 | 第22-26页 |
·试验材料 | 第22页 |
·培养基 | 第22-23页 |
·试验方法 | 第23-26页 |
·愈伤组织的诱导和继代 | 第23页 |
·侵染液的制备 | 第23页 |
·水稻愈伤组织侵染过程 | 第23-24页 |
·CTAB法提取DNA | 第24页 |
·PCR检测 | 第24-26页 |
3 结果与分析 | 第26-35页 |
·愈伤组织的诱导和继代培养 | 第26-29页 |
·不同培养基对0389成熟胚愈伤组织培养的影响 | 第26-28页 |
·不同培养基对双8S成熟胚愈伤组织培养的影响 | 第28-29页 |
·植物生长物质对籼稻成熟胚愈伤组织诱导的影响 | 第29页 |
·共培养时间对转化效率的影响 | 第29页 |
·筛选剂Basta使用浓度的确立 | 第29-31页 |
·抗性愈伤组织进行分化培养 | 第31-32页 |
·生根培养 | 第32-33页 |
·转化植株的PCR检测 | 第33-34页 |
·转化植株叶片电导率的变化 | 第34-35页 |
4 讨论 | 第35-39页 |
·0389和双8S愈伤组织诱导体系的建立 | 第35-38页 |
·愈伤组织诱导和继代培养 | 第35-36页 |
·转化方式和共培养时间的研究 | 第36-37页 |
·抗性愈伤组织筛选和分化培养 | 第37-38页 |
·后续研究设想 | 第38页 |
·创新之处 | 第38-39页 |
5 全文总结 | 第39-41页 |
参考文献 | 第41-47页 |
致谢 | 第47-48页 |
作者简历 | 第48页 |