| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第13-31页 |
| ·筛分子发育的研究进展 | 第13-15页 |
| ·筛分子分类 | 第13-14页 |
| ·筛分子结构和分化特征 | 第14-15页 |
| ·细胞编程性死亡研究进展 | 第15-28页 |
| ·细胞编程性死亡在动物中的分类 | 第15-16页 |
| ·植物中PCD的2大类型 | 第16-19页 |
| ·自动裂解性PCD：细胞质的快速降解 | 第16-18页 |
| ·非自动裂解性PCD:不伴随细胞质的快速降解 | 第18-19页 |
| ·动物和植物中PCD分类的比较 | 第19-22页 |
| ·凋亡 | 第19页 |
| ·自噬性细胞死亡 | 第19-21页 |
| ·坏死细胞死亡 | 第21-22页 |
| ·动物和植物中编程性死亡的机理 | 第22-28页 |
| ·动物中编程性死亡的机理 | 第22-24页 |
| ·植物编程性死亡机理 | 第24-28页 |
| ·筛分子编程性半死亡机理研究 | 第28-30页 |
| ·酸化 | 第28页 |
| ·液泡变化和蛋白酶 | 第28-29页 |
| ·半胱氨酸蛋白酶抑制因子 | 第29-30页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 2 材料与方法 | 第31-36页 |
| ·材料培养 | 第31页 |
| ·方法 | 第31-36页 |
| ·小麦颖果体视观察和取材方法 | 第31-32页 |
| ·小麦颖果腹部筛分子和根尖组织结构光镜观察 | 第32-33页 |
| ·超微结构观察 | 第33页 |
| ·酸性变化检测 | 第33页 |
| ·WAP1的免疫组织和超微定位 | 第33-34页 |
| ·WAP1免疫组织定位 | 第33-34页 |
| ·WAP1免疫超微定位 | 第34页 |
| ·WAP1 mRNA和cystatins mRNA原位杂交 | 第34-35页 |
| ·WAP1 mRNA的原位杂交 | 第34-35页 |
| ·Cystatins mRNA原位杂交 | 第35页 |
| ·组织蛋白酶B(cathepsin B)活性在根尖和腹部筛分子的原位检测 | 第35-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-41页 |
| ·颖果腹部韧皮部维管束位置 | 第36页 |
| ·筛分子超微结构变化 | 第36-38页 |
| ·筛分子里内质网与液泡的关系 | 第36-37页 |
| ·筛分子里核膜的变化 | 第37页 |
| ·筛分子里液泡的变化 | 第37-38页 |
| ·腹部维管束筛分子酸性变化 | 第38页 |
| ·WAP1免疫组织和亚细胞定位 | 第38-39页 |
| ·WAP1 mRNA原位组织杂交结果 | 第39页 |
| ·WCs mRNA原位组织杂交结果 | 第39页 |
| ·组织蛋白酶B活性在颖果腹部筛分子里的变化 | 第39页 |
| ·小麦根尖结构和筛分子分裂分化位置 | 第39-41页 |
| ·WCs mRNA在根尖筛分子的原位组织杂交结果 | 第41页 |
| ·组织蛋白酶B活性在小麦根尖组织结构里的变化 | 第41页 |
| 4 讨论 | 第41-53页 |
| ·韧皮部筛分子的结构与功能的一致性 | 第41-42页 |
| ·小液泡可能起源于内质网 | 第42-43页 |
| ·筛分子分化时细胞核和部分细胞质的降解 | 第43-46页 |
| ·筛分子分化过程中细胞核降解方式 | 第43-44页 |
| ·筛分子分化时细胞质的降解与液泡的关系 | 第44-46页 |
| ·筛分子分化的细胞编程性死亡分类 | 第46页 |
| ·筛分子分化时细胞质酸性变化 | 第46-48页 |
| ·液泡酸性水解酶(WAP1)和组蛋白酶B活性类似蛋白酶共同调控筛分子编程性半死亡 | 第48-49页 |
| ·筛分子分化时半胱氨酸蛋白酶抑制子的功能 | 第49-50页 |
| ·根部筛分子结构 | 第50-51页 |
| ·根尖筛分子分化时组织蛋白酶类和半胱氨酸蛋白酶抑制子功能 | 第51页 |
| ·小麦颖果腹部筛分子和根尖筛分子分化的区别 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-68页 |
| 附录1 论文图版 | 第68-97页 |
| 附录2 在读期间发表和拟发表的文章 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
