| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| ·海藻的研究概况 | 第11页 |
| ·海藻多糖的研究概况 | 第11-17页 |
| ·海藻多糖的提取、纯化方法 | 第12-14页 |
| ·海藻多糖生物活性研究进展 | 第14-17页 |
| ·紫菜多糖研究进展 | 第17-21页 |
| ·紫菜多糖结构与化学组成 | 第17-18页 |
| ·紫菜多糖的生物活性 | 第18-21页 |
| ·本文的研究内容及研究意义 | 第21-22页 |
| 第二章 同时提取条斑紫菜多糖和藻红蛋白的工艺研究 | 第22-44页 |
| ·材料与方法 | 第22-26页 |
| ·材料 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·主要仪器 | 第22-23页 |
| ·原料成分分析 | 第23页 |
| ·原料预处理 | 第23页 |
| ·藻胆蛋白特征吸收波长确定 | 第23页 |
| ·一步提取条斑紫菜多糖和藻红蛋白的工艺流程 | 第23页 |
| ·试验方法的确定 | 第23-25页 |
| ·单因素和正交试验 | 第25-26页 |
| ·统计方法 | 第26页 |
| ·结果与讨论 | 第26-42页 |
| ·条斑紫菜原料的成分组成 | 第26页 |
| ·藻胆蛋白特征吸收波长确定 | 第26-27页 |
| ·水浴提取单因素试验 | 第27-28页 |
| ·超声波辅助提取单因素和正交试验 | 第28-35页 |
| ·微波辅助提取单因素和正交试验 | 第35-41页 |
| ·不同提取方法结果的比较 | 第41-42页 |
| ·本章小结 | 第42-44页 |
| 第三章 条斑紫菜多糖除蛋白及其分离纯化技术研究 | 第44-56页 |
| ·材料与方法 | 第44-48页 |
| ·材料 | 第44页 |
| ·主要试剂 | 第44-45页 |
| ·主要仪器 | 第45页 |
| ·紫菜多糖含量的测定 | 第45页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第45-46页 |
| ·三氯乙酸结合蛋白变性温度法去蛋白 | 第46页 |
| ·超滤膜孔径大小的选择 | 第46-47页 |
| ·DEAE Cellulose-52离子柱层析法纯化紫菜多糖 | 第47页 |
| ·凝胶色谱法分离纯化紫菜粗多糖 | 第47-48页 |
| ·结果与讨论 | 第48-55页 |
| ·三氯乙酸结合蛋白变性温度去蛋白效果 | 第48-50页 |
| ·超滤膜孔径的选择 | 第50-51页 |
| ·两道膜超滤结果 | 第51页 |
| ·50k PYPS和3k PYPS的DEAE C-52分离结果 | 第51-53页 |
| ·50k PYPS Ⅰ和PYPS Ⅱ的Sephadex G-100纯化结果 | 第53-54页 |
| ·3k PYPS 1、2、3的Sephadex G-100纯化结果 | 第54-55页 |
| ·本章小结 | 第55-56页 |
| 第四章 纯化多糖的结构分析及In vitro抗肿瘤活性研究 | 第56-66页 |
| ·材料与方法 | 第56-58页 |
| ·材料及试剂 | 第56页 |
| ·主要仪器 | 第56-57页 |
| ·试验方法 | 第57-58页 |
| ·统计方法 | 第58页 |
| ·结果与讨论 | 第58-64页 |
| ·PYPSⅡa，PYPS 1a和PYPS 2a的紫外光谱分析 | 第58-59页 |
| ·PYPSⅡa，PYPS 1a和PYPS 2a的红外光谱分析 | 第59-61页 |
| ·PYPSⅡa，PYPS 1a和PYPS 2a的气相色谱分析 | 第61-63页 |
| ·PYPSⅡa和PYPS 2a对人肝癌细胞A549的In vitro抑制作用 | 第63-64页 |
| ·本章小结 | 第64-66页 |
| 全文结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 在读期间已发表与录用论文 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
