| 英文缩略词表 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-11页 |
| 论文正文 纳米颗粒标记膜层析快速检测抗HCV抗体试纸的初步研制 | 第11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一部分 纳米颗粒标记膜层析实验原材料的制备及筛选 | 第13-37页 |
| 第一节 兔抗HCV多克隆抗体的制备 | 第13-17页 |
| 实验材料 | 第13-14页 |
| 实验方法 | 第14-15页 |
| 实验结果 | 第15-16页 |
| 讨论 | 第16-17页 |
| 第二节 兔抗HCV多克隆抗体的纯化 | 第17-22页 |
| 实验材料 | 第17-18页 |
| 实验方法 | 第18-20页 |
| 实验结果 | 第20-21页 |
| 讨论 | 第21-22页 |
| 第三节 纳米颗粒的制备及筛选 | 第22-36页 |
| 实验一、 标记用胶体金颗粒的制备及应用 | 第22-28页 |
| 实验二、 标记用胶体硒颗粒的制备及应用 | 第28-31页 |
| 实验三、 标记用latex颗粒的应用 | 第31-34页 |
| 讨论 | 第34-36页 |
| 小结 | 第36-37页 |
| 第二部分 膜免疫层析膜材料的选择与层析条件优化 | 第37-52页 |
| 第一节 免疫层析膜材料的筛选 | 第37-41页 |
| 实验材料 | 第37页 |
| 实验方法 | 第37-38页 |
| 实验结果 | 第38-40页 |
| 讨论 | 第40-41页 |
| 第二节 纳米颗粒标记HCV抗原条件的优化 | 第41-47页 |
| 实验一、 纯化后HCV嵌合抗原最佳标记、包被缓冲液的确立 | 第41-43页 |
| 实验二、 纳米颗粒标记HCV抗原条件的优化 | 第43-46页 |
| 讨论 | 第46-47页 |
| 第三节 膜免疫层析条件的优化 | 第47-51页 |
| 实验材料 | 第47页 |
| 实验方法 | 第47-48页 |
| 实验结果 | 第48-50页 |
| 讨论 | 第50-51页 |
| 小结 | 第51-52页 |
| 第三部分 膜免疫层析试纸整体试验及初步评价 | 第52-57页 |
| 实验材料 | 第52页 |
| 实验方法 | 第52-53页 |
| 实验结果 | 第53-56页 |
| 讨论 | 第56页 |
| 小结 | 第56-57页 |
| 结语 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 文献综述 纳米材料及其在医学诊断中的应用 | 第64-73页 |
| 附录 已发表文章 | 第73页 |
