| 第一篇 文献综述 | 第1-27页 |
| 第一章 差异表达基因片段的分离策略 | 第9-19页 |
| ·抑制消减杂交技术 | 第9-13页 |
| ·概述 | 第9-10页 |
| ·抑制消减杂交原理图 | 第10页 |
| ·抑制消减杂交的优点和缺点 | 第10-12页 |
| ·优点 | 第10页 |
| ·缺点和不足 | 第10-12页 |
| ·抑制消减杂交技术在植物上的应用 | 第12页 |
| ·抑制消减杂交技术的应用前景 | 第12-13页 |
| ·分离差异基因片段的其他技术 | 第13-19页 |
| ·差减杂交 | 第13页 |
| ·差异显示PCR | 第13-14页 |
| ·DNA代表性差异分析 | 第14页 |
| ·RNA指纹技术 | 第14-15页 |
| ·cDNA捕捉法 | 第15页 |
| ·酵母双杂交系统 | 第15-16页 |
| ·扩增限制性片段长度多态性 | 第16页 |
| ·cDNA微量排列法 | 第16-17页 |
| ·寡核苷酸微点阵杂交 | 第17页 |
| ·外显子捕获法 | 第17页 |
| ·基因表达系统分析 | 第17-19页 |
| 第二章 蔗糖转化酶的研究进展 | 第19-27页 |
| ·概述 | 第19页 |
| ·蔗糖转化酶的分类 | 第19-20页 |
| ·蔗糖转化酶的累积部位 | 第20页 |
| ·蔗糖转化酶的功能 | 第20-25页 |
| ·蔗糖转化酶对植物生长、发育的影响 | 第20-22页 |
| ·蔗糖转化酶在响应胁迫时的作用 | 第22-23页 |
| ·调节果实和贮藏器官中糖分的比例 | 第23页 |
| ·参与细胞的形态发生 | 第23-24页 |
| ·蔗糖转化酶在糖信号中的作用 | 第24-25页 |
| ·蔗糖转化酶的调控 | 第25-26页 |
| ·前景和展望 | 第26-27页 |
| 第二篇 实验研究 | 第27-49页 |
| 第一章 前言 | 第27-28页 |
| 第二章 材料与方法 | 第28-36页 |
| ·材料 | 第28-29页 |
| ·水稻材料 | 第28页 |
| ·细菌菌种和克隆载体 | 第28页 |
| ·试剂盒 | 第28页 |
| ·限制性内切酶及试剂 | 第28页 |
| ·培养基 | 第28页 |
| ·水稻营养液 | 第28-29页 |
| ·所应用的软件及数据库 | 第29页 |
| ·方法 | 第29-36页 |
| ·水稻材料的培养及处理 | 第29-30页 |
| ·总RNA的提取、浓度测定及Poly(A)~+ mRNA的分离纯化 | 第30页 |
| ·抑制消减杂交 | 第30-31页 |
| ·差式文库的筛选 | 第31页 |
| ·连接反应 | 第31页 |
| ·感受态细菌的制备 | 第31页 |
| ·转化受体菌 | 第31-32页 |
| ·序列测定 | 第32页 |
| ·EST(Expressed sequence tag)分析 | 第32页 |
| ·逆转录反应 | 第32页 |
| ·水稻蔗糖转化酶基因全长序列的推测 | 第32-33页 |
| ·水稻蔗糖转化酶基因全长cDNA的获得 | 第33页 |
| ·引物序列的设计 | 第33-34页 |
| ·半定量PCR检测Osinv的表达活性 | 第34-36页 |
| 第三章 结果 | 第36-45页 |
| ·差异片段的PCR检测结果 | 第36页 |
| ·差式文库的地高辛标记筛选结果 | 第36-37页 |
| ·测序获得的部分差异片段的大小及其性质 | 第37-39页 |
| ·两个水稻蔗糖转化酶基因ESTs片段序列 | 第39页 |
| ·克隆得到的蔗糖转化酶基因的cDNA及序列分析 | 第39-41页 |
| ·Osinv基因组结构分析 | 第41-42页 |
| ·蔗糖转化酶基因氨基酸同源性比较 | 第42-44页 |
| ·蔗糖转化酶基因(Osinv)的表达活性研究 | 第44-45页 |
| ·不同组织中蔗糖转化酶基因的表达活性 | 第44页 |
| ·不同胁迫处理对蔗糖转化酶基因表达活性的影响 | 第44-45页 |
| 第四章 讨论 | 第45-48页 |
| ·关于抑制消减杂交技术 | 第45页 |
| ·差异片段功能的初步分析 | 第45-46页 |
| ·对水稻蔗糖转化酶基因的分析 | 第46-47页 |
| ·水稻蔗糖转化酶基因(Osinv)的表达谱分析 | 第47-48页 |
| 第五章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 附件 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |