| 目录 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-33页 |
| 1 产Curdlan菌株的研究历程 | 第13-14页 |
| ·产Curdlan菌株的发现 | 第13页 |
| ·产Curdlan菌株的诱变 | 第13-14页 |
| 2 Curdlan的分子结构和理化性质 | 第14-18页 |
| ·β-1，3-葡聚糖 | 第14-15页 |
| ·Curdlan的外观和溶解性 | 第15页 |
| ·Curdlan的高级结构 | 第15-18页 |
| 3 Curdlan凝胶 | 第18-22页 |
| ·Curdlan凝胶的制备 | 第18-19页 |
| ·Curdlan凝胶强度的影响因素 | 第19-20页 |
| ·Curdlan形成凝胶过程中的结构变化 | 第20-21页 |
| ·Curdlan凝胶的脱水性 | 第21-22页 |
| 4 Curdlan的生物合成 | 第22-23页 |
| 5 Curdlan的发酵生产 | 第23-24页 |
| ·碳源的影响 | 第23页 |
| ·氮源的影响 | 第23页 |
| ·供氧的影响 | 第23-24页 |
| ·磷酸盐的影响 | 第24页 |
| ·pH的影响 | 第24页 |
| 6 Curdlan的应用 | 第24-28页 |
| ·作为活性多糖的保健功能 | 第24-26页 |
| ·Curdlan在食品工业上的应用 | 第26-27页 |
| ·Curdlan其它方面的应用 | 第27页 |
| ·Curdlan的社会、生态效益 | 第27页 |
| ·国内Curdlan研究现状和应用 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-33页 |
| 2 可得兰多糖(Curdlan)的培养基条件研究 | 第33-47页 |
| 1 材料和方法 | 第33-35页 |
| ·材料 | 第33页 |
| ·菌种 | 第33页 |
| ·试剂 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-34页 |
| ·培养基 | 第33页 |
| ·培养条件 | 第33-34页 |
| ·测定方法 | 第34页 |
| ·实验设计 | 第34-35页 |
| ·部分因子实验(FFD) | 第34页 |
| ·中心组合实验(CCD) | 第34-35页 |
| 2 结果与分析 | 第35-45页 |
| ·碳源对Curdlan发酵的影响 | 第35-36页 |
| ·氮源对Curldan发酵的影响 | 第36-37页 |
| ·碳酸钙对Curdlan发酵的影响 | 第37页 |
| ·柠檬酸钾对Curdlan发酵的影响 | 第37-38页 |
| ·正交实验 | 第38-39页 |
| ·尿嘧啶对Curdlan发酵的影响 | 第39页 |
| ·KH_2PO_4对Curdlan发酵的影响 | 第39-40页 |
| ·发酵培养基的优化 | 第40-45页 |
| ·部分因子实验(FFD) | 第40-41页 |
| ·中心组合实验(CCD) | 第41-45页 |
| ·发酵过程测定 | 第45页 |
| 3 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-47页 |
| 3 可得兰多糖(Curdlan)发酵培养条件的研究 | 第47-62页 |
| 1 材料和方法 | 第47-48页 |
| ·材料 | 第47页 |
| ·菌种 | 第47页 |
| ·试剂 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| ·培养基 | 第47页 |
| ·培养条件 | 第47-48页 |
| ·测定方法 | 第48页 |
| ·实验设计 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-60页 |
| ·接种量对Curdlan发酵的影响 | 第48-49页 |
| ·种龄对Curdlan发酵的影响 | 第49页 |
| ·装液量对Curdlan发酵的影响 | 第49-50页 |
| ·摇床转速对Curdlan发酵的影响 | 第50页 |
| ·初始pH值对Curdlan发酵影响 | 第50-51页 |
| ·温度对Curdlan发酵的影响 | 第51-52页 |
| ·发酵时间对Curdlan发酵的影响 | 第52页 |
| ·助溶氧添加剂对Curdlan发酵的影响 | 第52-53页 |
| ·部分因子实验(FFD) | 第53-55页 |
| ·中心组合实验(CCD) | 第55-58页 |
| ·发酵罐实验 | 第58-59页 |
| ·发酵过程中Curdlan的快速测定模型 | 第59-60页 |
| 3 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-62页 |
| 4 可得兰多糖(Curdlan)的提取、分离和纯化 | 第62-77页 |
| 1 材料 | 第62页 |
| 2 Curdlan粗多糖提取工艺 | 第62-64页 |
| ·醇析法 | 第62页 |
| ·酸碱法 | 第62页 |
| ·碱-醇法 | 第62-63页 |
| ·钙盐-乙醇法 | 第63页 |
| ·硅藻土-乙醇法 | 第63页 |
| ·酶法 | 第63-64页 |
| ·测试方法 | 第64页 |
| 3 Curdlan的分离与纯化 | 第64-65页 |
| ·Curdlan的分离 | 第64页 |
| ·Sevage法脱蛋白 | 第64页 |
| ·透析 | 第64页 |
| ·样品含氮量和含糖量的测定 | 第64页 |
| ·CD-2样品的纯化 | 第64-65页 |
| ·Sephadex G-100柱层析 | 第64页 |
| ·Sephadex G-200柱层析 | 第64-65页 |
| ·CD-3样品的纯度鉴定 | 第65页 |
| ·Sephadex G-200柱层析 | 第65页 |
| ·紫外光谱分析 | 第65页 |
| 4 Curdlan CD-3样品的理化性质分析 | 第65-66页 |
| ·物理性质 | 第65页 |
| ·溶解性 | 第65页 |
| ·凝胶性 | 第65页 |
| ·化学性质 | 第65-66页 |
| ·酚-硫酸反应 | 第65页 |
| ·蒽酮反应 | 第65页 |
| ·α-萘酚反应 | 第65-66页 |
| ·Fehling反应 | 第66页 |
| ·Schiff反应 | 第66页 |
| 5 结果与分析 | 第66-74页 |
| ·Curdlan粗多糖的提取 | 第66-71页 |
| ·醇析法 | 第66-67页 |
| ·酸碱法 | 第67页 |
| ·碱-醇法 | 第67-68页 |
| ·钙盐-乙醇法 | 第68-69页 |
| ·硅藻土-乙醇法 | 第69页 |
| ·酶解法 | 第69-71页 |
| ·Curdlan粗多糖新提取工艺的设计 | 第71页 |
| ·Curdlan的分离与纯化 | 第71-74页 |
| ·Curdlan的分离 | 第71-72页 |
| ·CD-2样品的纯化 | 第72-73页 |
| ·Sephadex G-100柱层析 | 第72页 |
| ·Sephadex G-200柱层析 | 第72-73页 |
| ·CD-3样品纯度鉴定 | 第73页 |
| ·Sephadex G-200柱层析 | 第73页 |
| ·紫外光谱分析 | 第73页 |
| ·Curdlan的理化性质 | 第73-74页 |
| ·CD-3样品的物理性质 | 第73-74页 |
| ·CD-3样品的化学性质 | 第74页 |
| 6 结论 | 第74-76页 |
| ·Curdlan粗多糖提取工艺的优化 | 第74-75页 |
| ·Curdlan粗多糖的分离、纯化及纯度检测 | 第75页 |
| ·Curdlan的理化性质 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-77页 |
| 5 可得兰多糖(Curdlan)分子结构分析及改造的研究 | 第77-89页 |
| 1 实验材料 | 第77页 |
| 2 实验方法 | 第77-79页 |
| ·CD-3样品的分子结构检测 | 第77-78页 |
| ·CD-3样品分子量测定 | 第77页 |
| ·CD-3样品组成分析 | 第77页 |
| ·高碘酸氧化 | 第77-78页 |
| ·红外光谱 | 第78页 |
| ·分子构象测定 | 第78页 |
| ·核磁共振分析 | 第78页 |
| ·Curdlan硫酸化衍生物(CDRS)的制备 | 第78页 |
| ·低取代度CDRS的制备 | 第78页 |
| ·SPC法制备CDRS | 第78页 |
| ·CDRS硫酸基的检测 | 第78页 |
| ·羧甲基化Curdlan(CM-CD)的制备 | 第78-79页 |
| ·实验流程 | 第78页 |
| ·CM-CD的检测 | 第78-79页 |
| ·结构测定 | 第79页 |
| ·羧甲基定量测定 | 第79页 |
| 3 结果与分析 | 第79-86页 |
| ·CD-3样品的结构分析 | 第79-82页 |
| ·CD-3样品的分子量测定 | 第79页 |
| ·CD-3样品的多糖组成分析 | 第79页 |
| ·高碘酸氧化 | 第79-80页 |
| ·红外光谱分析 | 第80页 |
| ·CD-3样品的构象分析 | 第80-81页 |
| ·CD-3样品的核磁共振结果分析 | 第81-82页 |
| ·Curdlan硫酸化结果与分析 | 第82-84页 |
| ·CDRS的理化性质 | 第82页 |
| ·低取代度法制备CDRS结果分析 | 第82页 |
| ·搅拌对CDRS含硫量的影响 | 第82页 |
| ·浓硫酸添加量对CDRS含硫量的影响 | 第82页 |
| ·0℃反应试间对CDRS含硫量的影响 | 第82页 |
| ·SPC法制备CDRS结构分析 | 第82-83页 |
| ·氯磺酸/吡啶的比例对CDRS含硫量的影响 | 第82页 |
| ·酯化试剂冷藏时间对CDRS含硫量的影响 | 第82页 |
| ·反应时间对CDRS含硫量的影响 | 第82-83页 |
| ·硫酸化过程中Curdlan分子结构破坏和水解分析 | 第83-84页 |
| ·低取代度法 | 第83-84页 |
| ·SPC法 | 第84页 |
| ·CDRS红外图谱分析 | 第84页 |
| ·Curdlan羧甲基化结果与分析 | 第84-86页 |
| ·CM-CD的红外图谱分析 | 第84-85页 |
| ·CM-CD的核磁共振图谱分析 | 第85-86页 |
| ·CM-CD取代度检测 | 第86页 |
| 4 结论 | 第86-87页 |
| ·Curdlan CD-样品的分子结构检测 | 第86页 |
| ·CDRS的制备和分子结构分析 | 第86-87页 |
| ·CM-CD的制备和分子结构分析 | 第87页 |
| 参考文献 | 第87-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
